ĐẠI HỌC QUỐC GIA HÀ NỘI TRƢỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC TỰ NHIÊN - Nguyễn Thị Mai Lƣơng NGHIÊN CỨU KHẢ NĂNG CHỊU AXIT VÀ HẤP THỤ NHÔM CỦA VI SINH VẬT ĐƢỢC PHÂN LẬP TỪ ĐẤT TRỒNG CHÈ VÙNG TÂN CƢƠNG, THÁI NGUYÊN LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC Hà Nội - 2018 ĐẠI HỌC QUỐC GIA HÀ NỘI TRƢỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC TỰ NHIÊN - Nguyễn Thị Mai Lƣơng NGHIÊN CỨU KHẢ NĂNG CHỊU AXIT VÀ HẤP THỤ NHÔM CỦA VI SINH VẬT ĐƢỢC PHÂN LẬP TỪ ĐẤT TRỒNG CHÈ VÙNG TÂN CƢƠNG, THÁI NGUYÊN Chuyên ngành: Khoa học môi trường Mã số: 8440301.01 LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: PGS TS Ngô Thị Tường Châu Hà Nội – 2018 LỜI CẢM ƠN Để có kết nghiên cứu này, ngồi nỗ lực thân, tơi nhận nhiều quan tâm, động viên, giúp đỡ tập thể, cá nhân ngồi trường Trước tiên, tơi xin tỏ lịng biết ơn sâu sắc đến PGS TS Ngô Thị Tường Châu – người trực tiếp hướng dẫn, tận tình bảo, động viên ln dõi theo sát q trình thực đề tài Tiếp theo, xin gửi lời cảm ơn chân thành đến thầy, cô, cán khoa Môi trường, trường Đại học Khoa học Tự nhiên – Đại học Quốc gia Hà Nội nói chung thầy, mơn Tài ngun Mơi trường đất nói riêng tạo điều kiện thuận lợi cho tơi q trình thực đề tài, truyền đạt cho kiến thức, kinh nghiệm q báu, lời khun bổ ích Tơi xin chân thành cảm ơn thầy, cơ, cán Phịng thí nghiệm Phân tích mơi trường thầy, cơ, anh/chị/bạn làm việc Phịng thí nghiệm Thổ nhưỡng Mơi trường Đất ln nhiệt tình giúp đỡ, tạo điều kiện tốt để tơi hồn thành luận văn Tôi xin gửi lời cảm ơn tới cô bác nông dân hợp tác xã (HTX) chè Soi Vàng HTX chè Hồng Thái, xã Tân Cương, thành phố Thái Nguyên, tỉnh Thái Nguyên tận tình giúp đỡ tơi địa phương làm việc Cuối cùng, xin gửi lời cảm ơn đặc biệt đến gia đình bạn bè người bên động viên giúp đỡ tơi gặp khó khăn q trình làm luận văn Do thời gian kinh nghiệm hạn chế nên luận văn khoa học tơi cịn nhiều thiếu sót, kính mong nhận góp ý thầy cô giáo, anh/chị bạn bè để luận văn tơi hồn chỉnh Tơi xin chân thành cảm ơn! Hà Nội, ngày 30 tháng 12 năm 2018 Học viên cao học Nguyễn Thị Mai Lương i MỤC LỤC LỜI CẢM ƠN i DANH MỤC BẢNG v DANH MỤC HÌNH vi DANH MỤC KÝ HIỆU, CHỮ VIẾT TẮT .vii MỞ ĐẦU CHƢƠNG TỔNG QUAN 1.1 Tổng quan chè đất trồng chè 1.1.1 Tổng quan chè 1.1.2 Tổng quan đất trồng chè 1.2 Tổng quan khả hút thu nhôm chè 1.3 Tổng quan mối quan hệ nhôm số bệnh liên quan .7 1.4 Tổng quan khả chịu axit hấp thụ kim loại vi sinh vật .8 1.4.1 Ảnh hưởng axit đến hoạt động sống vi sinh vật .8 1.4.2 Ảnh hưởng nhôm kim loại nặng đến hoạt động vi sinh vật 10 1.4.3 Vi sinh vật kháng kim loại 11 1.4.4 Vi sinh vật kháng nhôm 13 1.4.5 Khả loại bỏ kim loại khỏi môi trường vi sinh vật .14 1.5 Tổng quan tình hình nghiên cứu ứng dụng vi sinh vật chịu axit hấp thụ nhôm nước……………………………………… …………… 16 CHƢƠNG ĐỐI TƢỢNG VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 19 2.1 Đối tượng nghiên cứu 19 2.2 Phương pháp nghiên cứu 19 2.2.1 Phương pháp thu thập tài liệu sơ cấp thứ cấp 19 2.2.2 Phương pháp thu mẫu xử lý mẫu 19 2.2.3 Phương pháp xác định số tính chất đất 20 2.2.4 Phương pháp phân lập chủng vi sinh vật chịu axit hấp thụ nhôm 21 2.2.5 Phương pháp tuyển chọn chủng vi sinh vật có khả chịu axit hấp thụ nhôm cao từ chủng phân lập 22 ii 2.2.6 Phương pháp định danh chủng vi sinh vật chịu axit có khả hấp thụ nhôm cao tuyển chọn 23 2.2.7 Phương pháp nghiên cứu khả chịu axit chủng vi sinh vật tuyển chọn 25 2.2.8 Nghiên cứu khả hấp thụ nhôm chủng vi sinh vật tuyển chọn 25 2.2.9 Phương pháp sơ đánh giá khả ứng dụng hỗn hợp vi sinh vật nhằm hạn chế hàm lượng nhôm linh động đất trồng chè .26 2.2.10 Phương pháp xử lý số liệu 28 CHƢƠNG KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 29 3.1 Một số tính chất hàm lượng nhôm tổng số đất trồng chè vùng Tân Cương, Thái Nguyên 29 3.1.1 Một số tiêu lí, hóa học đất 29 3.1.2 Mật độ vi sinh vật tổng số đất 33 3.2 Kết phân lập chủng vi sinh vật chịu axit hấp thụ nhôm từ đất trồng chè vùng Tân Cương, Thái Nguyên 34 3.3 Kết tuyển chọn chủng vi sinh vật chịu axit hấp thụ nhôm phân lập từ đất trồng chè vùng Tân Cương, Thái Nguyên 37 3.4 Kết định danh chủng vi sinh vật có khả kháng nhơm cao tuyển chọn 38 3.4.1 Kết định danh chủng vi khuẩn B2 38 3.4.2 Kết định danh chủng vi khuẩn B4 40 3.4.3 Kết định danh chủng nấm mốc F8 41 3.4.4 Kết định danh chủng nấm mốc F13 42 3.4.5 Kết định danh chủng nấm mốc F17 44 3.5 Kết nghiên cứu khả chịu axit chủng vi sinh vật tuyển chọn .47 3.6 Khả sinh trưởng, phát triển hấp thụ nhôm chủng vi sinh vật tuyển chọn 49 iii 3.7 Kết sơ đánh giá khả ứng dụng hỗn hợp vi sinh vật nhằm hạn chế hàm lượng nhôm linh động đất trồng chè………………………………… 52 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 55 KẾT LUẬN 55 KIẾN NGHỊ 56 TÀI LIỆU THAM KHẢO PHỤ LỤC iv DANH MỤC BẢNG Bảng 2.1 Bảng ký hiệu mẫu đất 19 Bảng 2.2 Thành phần môi trường nước thịt pepton 20 Bảng 2.3 Thành phần môi trường chủng vi sinh vật 22 Bảng 2.4 Chu kỳ nhiệt cho phản ứng PCR……………………………………… 24 Bảng 3.1 Một số tiêu lí, hóa học mẫu đất nghiên cứu 29 Bảng 3.2 Mật độ tế bào vi sinh vật tổng số đất 33 Bảng 3.3 Đặc điểm hình thái chủng vi sinh vật phân lập 35 ảng 3.4 Hiệu suất hấp thụ nhôm chủng vi sinh vật nghiên cứu môi trường nuôi cấy chứa nồng độ nhôm khác (%) 52 ảng 3.5 Hàm lượng nhôm linh động mẫu đất nghiên cứu…………….53 v DANH MỤC HÌNH Hình 3.1 Hình thái tế bào (×100) chủng vi khuẩn B2 38 Hình 3.2 Trình tự gen 16S rRNA chủng vi khuẩn B2 38 Hình 3.3 Kết so sánh chi tiết trình tự tương đồng chủng tra cứu NCBI 39 Hình 3.4 Hình thái tế bào (×100) chủng B4 40 Hình 3.5 Trình tự gen 16S rRNA chủng vi khuẩn B4 40 Hình 3.6 Kết so sánh chi tiết trình tự tương đồng chủng B4 tra cứu NCBI 41 Hình 3.7 Hình thái khuẩn lạc đĩa thạch Sabouraud trình tự gen 28S rRNA chủng F8 42 Hình 3.8 Kết so sánh chi tiết trình tự tương đồng chủng F8 tra cứu NCBI 42 Hình 3.9 Hình thái khuẩn lạc đĩa thạch Sabouraud chủng F13 .43 Hình 3.10 Trình tự gen 28S rRNA chủng F13 43 Hình 3.11 Kết so sánh chi tiết trình tự tương đồng chủng F13 tra cứu NCBI 44 Hình 3.12 Hình thái khuẩn lạc đĩa thạch trình tự gen 28S rRNA chủng F17 45 Hình 3.13 Kết so sánh chi tiết trình tự tương đồng chủng F17 tra cứu NCBI 46 Hình 3.14 Biểu diễn ảnh hưởng pH đến sinh trưởng phát triển chủng vi khuẩn B2 B4 46 Hình 3.15 Biểu diễn lượng sinh khối tạo thành chủng nấm mốc mơi trường có pH khác 49 Hình 3.16 Sinh khối chủng F8 trái ; F13 (giữa) F17 (phải) môi truờng Hansen pH 2,4 49 Hình 3.17 Biểu đồ biểu diễn ảnh hưởng nồng độ nhôm môi trường đến sinh trưởng phát triển vi khuẩn B2 B4 50 Hình 3.18 Biểu đồ biểu diễn khả sinh trưởng phát triển chủng nấm mốc môi trường dịch thể có hàm lượng nhơm khác 51 vi DANH MỤC KÝ HIỆU, CHỮ VIẾT TẮT Từ vi EG FA HCB ICP – HT KL M NC TC US VS WH vii 23 Joho M, Inouhe M, Tohoyama H, and Murayama T (1995), “Nickel resistance in yeast and other fungi”, J Ind Microbiol., 14, pp 164-168 24 Kanazawa S and Kunito T (1996), “Preparation of pH 3.0 agar plate, enumeration of axit-tolerant and Al-resistant microorganisms in axit soils”, Soil Sci Plant Nutr., 42, pp 165 – 173 25 Kanazawa S, Ngo Thi Tuong Chau, and Miyaki S (2005), “Identification and Characterization of yeasts with tolerance to high axitity and resistance to Aluminum isolated from tea soils”, Soil Sci Plant Nutr., 51 (4), pp 507 – 513 26 Kikuchi T (1965), “Studies on the pathway of sulphide production in a copper-adapted yeast”, Plant Cell Physiol., 6, pp 195 – 210 27 Kochian LV (1995), “Cellular mechanisms of aluminium toxicity and resistance in plants”, Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol., 46, pp 237-260 28 Komura I and Izaki K (1971), “Mechanism of mercuric chloride resistance in microorganisms I Vaporization of a mercury compound from mercuric chloride by multiple drug resistant strains of Escherichia coli”, J Biochem., 70, pp 885 – 893 29 Konishi S, Souta I, Takahashi J, Ohmoto M, and Kaneko S (1994), “Isolation and characteristics of axit and aluminum-tolerant bacterium”, Biosci Biotech Biochem., 58, pp 1960 – 1963 30 th Lansing MP, John PH, and Donald AK (2001), “Microbiology”, ed., International Edition ISBN 0-07-112259-1, pp.123-125 31 Macdonald T and Martin RB (1988), “Aluminum ion in biological system” Trends Biochem Sci., 13, pp 15-19 32 Mahboobeh Ghoochani, Sakine Shekoohiyan, Masoud Yunesian, Shahrokh Nazmara and Amir Hossein Mahvi 2015 , “Determination of aluminum and zinc in infusion tea cultivated in north of Iran”, Journal of Environmental Health Science & Engineering, 13 (49) 33.Matsumoto, H., Hiraseva, E., Morimura, S & Takahashi, E (1976), “Localization of aluminum in tea leaves” Plant Cell Physiol 17, pp 627-631 34 Mark RB, Sanjay K, and Frederick WO (2000), “Microbial Resistance to Metals in the Environment”, Ecotoxicol Environ Saf., 45, pp 198 – 207 35 Martin RB (1986), “The chemistry of aluminum as related to biology and medicine”, Clin Chem., 32, pp 1797 – 1806 36 May, H.M & Nordstrom, D.K 1991 , “Assessing the solubilities and reaction kinetics of aluminous minerals in soil”, in Soil Acidity (Urlich, B & Sumner, M.E., eds.), pp 125-148, Springer-Verlag, Berlin 37 Mehra RK and Winge DR (1991), “Metal ion resistance in fungi: molecular mechanisms and their related expression”, J Cell Biochem., 45, pp 30 – 40 38 Murata K, Fukuda Y, Shimosaka M, Wantanabe K, Saikusa T, and Kimura A (1985), “Phenotypic character of the methylglycoxal resistance gene in Saccharomyces cerevisae: expression in Escherichia coli and application to breeding wild-type yeast strains”, Appl Environ Microbiol., 50, pp 1200 – 1207 39 Nayak P (2002), “Aluminium: Impacts and disease”, Environ Res Sect A, 89, pp 101 – 115 40 Nguyen VAT, Senoo K, Mishima T, and Hisamatsu M (2001), “Multiple Tolerance of Rhodotorula ghtirtis R-1 to Acid, Aluminum Ion and Manganese Ion, and Its Unusual Ability of Neutralizing Acidic Medium”, J Biosci Bioeng., 92(4), pp 366371 41 Ngo Thi Tuong Chau, Le Van Thien and Shinjiro Kanazawa (2014), “Identification and characterization of axitity-tolerant and aluminum – resistant bacterium isolate from tea soil”, African Journal of Biotechnology, 13(27), pp 2715 – 2726 42 Nies DH (1999), “Microbial heavy metal resistance”, Appl Microbiol Biotechnol., 57, pp 730 – 750 43 Nioh I, Osada M, Yamamura T, and Muramatsu K 1995: Acidophilic and Acidotolerant Actinomycetes in an Acid Tea Field Soil J Gen Appl Microbiol., 41(2), pp 175-180 44 Olivier J, Symington EA, Jonker CZ, Rampedi IT, Van Eeden TS (2012), “Comparison of the mineral composition of leaves and infusions of traditional and herbal teas”, Soil African Journal Science, 108, pp – 45 Pina RG and Cervantes C (1996), “Microbial interactions with aluminum”, Biometals, 9, pp 311 – 316 46 Qin F, Chen W 2007 , “Lead and copper levels in tea samples marketed in eijing, China”, Bull Environ Contam Toxicol, 79(3), pp 247 – 50 nd 47 Robert LT (2000), Soil Microbiology 150 ed., John Wiley& Sons, Inc, pp 149- 48 Ross IS (1975), “Some effects of heavy metals on fungal cells”, Trans Br Mycol Soc., 64, pp 175 – 193 49 Sabine G and Eleanora IR (2000), Acidophilic and acid-tolerant fungi and yeasts Hydrobiologia, 433, pp 91–109 50 Scott JA and Palmer S J (1988), “Cadmium bio-sorption by bacterial exopolysaccharide”, Biotechnol Lett., 10, pp 21 – 24 51 Silver S, Nucifors G, Chu L, and Misra TK (1989), “Bacterial resistance ATPases: Primary pumps for exporting toxic cations and anions”, Trends Biochem Sci., 14, pp 76 – 80 52 Silver S and Phung LT (1996), “Bacterial heavy metal resistance: new surprises”, Annu Rev Microbiol., 50, pp 753 – 789 53 Swan TM and Watson K (1997 , “Membrane fatty acid composition and membrane fluidity as parameters of stress tolerance in yeast Can J Microbiol., 43, pp 70-77 54 Teresa Mossor – Pietraszewska (2001), “Effect of aluminium on plant growth and metabolism”, Acta, Biochimica, Polonica, pp 673 – 686 55 Tobin J, White C, and Gadd GM 1994: Fungal accumulation of toxic metals and application to environmental technology J Indust Microbiol., 13, pp 126-130 56 Tonomura K, Maeda K, and Futai F (1968), “Studies on the action of mercury-resistant microorganisms on mercurials II The vaporization of mercurials stimulated by mercury-resistant bacterium”, J Ferment Technol., 46, pp 685 – 692 57 Veglio' F and Beolchini F (1997), “Removal of metals by biosorption: a review”, Hydrometallurgy, 44, pp 301 – 316 58 Volesky B and May-Phillips HA (1995 , “Biosorption of heavy metals by Saccharomyces cerevisiae” Appl Microbiol Biotechnol., 42, pp 797-806 59 Vyas P, Rahi P, Chauhan A, Gulati A 2007 , “Phosphate solubilization potential and stress tolerance of Eupenicillium parvum from tea soil”, Mycol Res 111, pp 931–938 60 Wales DS and Sagar BF (1990), “Recovery of metal ions by microfungal filters”, J Chem Technol Biotechnol., 49, pp 345 – 355 61 Weast RC (1984), CRC handbook of chemistry and physics, CRC, Boca Raton, Florida 62 White C and Gadd GM (1995), “Determination of metals and metal fluxes in algae and fungi”, Sci Total Environ., 176, pp 107-115 63 White C, Sayer JA, and Gadd GM (1997), “Microbial solubilization and immobilization of toxic metals: key biogeochemical processes for treatment of contamination”, FEMS Microbiol Rev., 20(3-4), pp 503-516 64 Zhang D, Duine J, Kawai F 2002 , “The extremely high Al resistance of Penicillium janthineleum F-13 is not caused by internal or external sequestration of Al”, Biometals (15), pp 167–174 65 Zenova GM, Zakalyukina YV, and Zvyagintsev DG (2000), “Acidotolerant Actinomycetes in Soils”, Pochvovedenie, 9, pp 1114-1116 Một số trang web tham khảo: 66 https://chebuptancuong.com/loai-dat-nao-phu-hop-voi-cay-che.html 67 Quang Thịnh (2008), Nhôm sức khỏe người PHỤ LỤC Phụ lục 1: Tiêu chuẩn McFarland Tiêu chuẩn McFarland sử dụng để chuẩn hóa số lượng vi khuẩn gần hệ thống chất lỏng cách so sánh độ đục hệ thống thử với tiêu chuẩn McFarland Tiêu chuẩn McFarland dung dịch hóa học bari clorua axit sulfuric; phản ứng hai chất tạo kết tủa bari sulfat Khi trình lắc diễn tốt, độ đục tiêu chuẩn McFarland so sánh trực quan với mật độ vi khuẩn bảng đây: TM50 TM51 TM52 TM53 TM54 TM55 TM56 TM57 TM58 TM59 Trước sử dụng, tiêu chuẩn McFarland nên lắc tốt chia thành phần ống nghiệm giống hệt sử dụng để chuẩn bị dung dịch Sau lấymẫu ống nên niêm phong chặt chẽ để tránh bốc Trước lần sử dụng, lắc để đảm bảo bari sulfat phân bố suốt dung dịch Tiêu chuẩn sử dụng phổ biến phịng thí nghiệm vi sinh vật học tiêu chuẩn McFarland 0,5 quy định để điều chỉnh độ đục huyền dịch ni cấy vi khuẩn cho thử nghiệm tính nhạy cảm kháng sinh Chuẩn bị tiêu chuẩn McFarland 0,5: Độ đục chuẩn 0,5 Mcfarland chuẩn bị cách trộn: - Dung dịch BaCl2 1%: 0,5ml - Dung dịch H2SO4 1%: 99,5 ml - Trộn dung dịch pha để thu hỗn hợp có độ đục tương đương Chia vào tube thủy tinh hàn k n để tránh bay hơi, ống đục chuẩn giữ vịng tháng bóng tối nhiệt độ phòng - Lắc trước sử dụng để làm tan hạt BaSO4 kết tủa tube Kiểm tra độ xác độ đục chuẩn 0,5 Mcfaland Đo máy đo độ đục bước sóng 625 nm: OD = 0,08-0,1 - Hoặc sử dụng chủng chuẩn E coli ATCC 15922: điều chỉnh huyền dịch vi khuẩn giống với độ đục chuẩn, chuẩn bị độ pha loãng 10 lần huyền dịch, xác định số lượng vi khuẩn phương pháp đếm đĩa thạch Huyền dịch vi khuẩn có độ đục với độ đục chuẩn 0,5 phải có số lượng vi khuẩn 10 vi khuẩn/ml Dùng que cấy lấy khuẩn lạc từ ống nghiệm giữ giống vi khuẩn tuyển chọn h a vào 100 ml nước cất lần khử trùng So sánh độ đục dung dịch vừa pha thẻ Wickerham, cho độ đục dịch huyền phù vi khuẩn tương tự với độ đục môi trường McFarland pha Phụ lục 2: Một số hình ảnh kết nghiên cứu đề tài Hình Một số chủng nấm mốc phân lập từ MĐ1 Hình Một số chủng nấm mốc phân lập từ MĐ2 Hình Một số chủng nấm mốc phân lập từ MĐ3 Hình Các chủng vi khuẩn B1, B2, B3 môi trƣờng thạch chứa hàm lƣợng Al 3+ lần lƣợt 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l Hình Các chủng vi khuẩn B4, B5, B6 môi trƣờng thạch chứa hàm lƣợng Al 3+ lần lƣợt 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l Hình Các chủng vi khuẩn B7, B8, B9 môi trƣờng thạch chứa hàm lƣợng Al 3+ lần lƣợt 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l Hình Các chủng vi khuẩn B10, B11, B12 môi trƣờng thạch chứa hàm lƣợng Al 3+ lần lƣợt 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l Hình Chủng môi trường thạch chứa hàm lượng Al 3+ 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l Hình Chủng môi trường thạch chứa hàm lượng Al 3+ 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l Hình 10 Chủng môi trường thạch chứa hàm lượng Al 3+ 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l Hình 11 Chủng mơi trường thạch chứa hàm lượng Al 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l 3+ Hình 12 Chủng 10 môi trường thạch chứa hàm lượng Al 3+ 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l Hình 13 Chủng 11 12 môi trường thạch chứa hàm lượng Al 3+ 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l Hình 14 Chủng 13 14 môi trường thạch chứa hàm lượng Al 3+ 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l Hình 15 Chủng 15 16 môi trường thạch chứa hàm lượng Al 300 mg/l, 500 mg/l 700 mg/l 3+ Hình 16 Sinh khối chủng F17 thu từ mơi trường nuôi cấy chứa 500 mg/l 1000 mg/l (trái sang phải) Al 3+ B2 B4 Hình 17 Sự phát triển chủng môi trường chứa 100 mg/l Al 3+ pH từ đến 5,0 (trái sang phải) B2 B4 Hình 18 Sự phát triển chủng môi trường chứa nồng độ nhôm từ 100 – 2000 mg/l (trái sang phải), pH 3,0 Phụ lục Một số bảng số liệu gốc Bảng Số lượng tế bào chủng vi khuẩn B2 B4 giá trị pH khác (CFU/ml) pH B2.1 2,4 2,1x10 2,6 2,4x10 2,8 1,1x10 3,0 7,2x10 5,0 3,5x10 Bảng Số lượng tế bào chủng vi khuẩn mơi trường axit có chứa nồng độ nhơm khác (CFU/ml) Nồng độ nhôm B2.1 (mg/l) 100 2,3x10 500 1,9x10 1000 1,7x10 2000 1,4x10 Bảng Khối lượng sinh khối khô chủng nấm mốc F8, F13 F17 mơi trường có pH khác (g/l) E P P Bảng Khối lượng sinh khối khô chủng nấm mốc F8, F13 F17 môi trường có chứa nồng độ nhơm khác (g/l) ... axit hấp thụ nhôm vi sinh vật phân lập từ đất trồng chè vùng Tân Cương, Thái Nguyên? ??  Mục đ ch đề tài Phân lập chủng VSV chịu axit hấp thụ nhôm từ đất trồng chè vùng Đánh giá khả chịu axit hấp thụ. .. số đất 33 3.2 Kết phân lập chủng vi sinh vật chịu axit hấp thụ nhôm từ đất trồng chè vùng Tân Cương, Thái Nguyên 34 3.3 Kết tuyển chọn chủng vi sinh vật chịu axit hấp thụ nhôm phân. .. tổng số hàm lượng nhôm (tổng số linh động) số mẫu đất trồng chè vùng Tân Cương, Thái Nguyên - Phân lập hệ VSV chịu axit hấp thụ nhôm từ số mẫu đất trồng chè vùng Tân Cương, Thái Nguyên - Tuyển chọn