ẢNH HƯỞNG CỦA MANNAN OLIGOSACCHARIDE TRONG SẢN PHẨM ACTIGEN TM LÊN KHẢ NĂNG TĂNG TRƯỞNG VÀ CẢI THIỆN SỨC KHỎE CÁ TRA (Pangasianodon hypophthalmus) Đào Ngọc Thủy, Ngô Lâm Trung Nguyên, Lê Thanh Hùng Khoa Thủy Sản, Đại Học Nông Lâm TP Hồ Chí Minh 1. ĐẶT VẤN ĐỀ Cá tra là loài cá được nuôi phổ biến ở các tỉnh đồng bằng sông Cửu Long, đóng góp khá lớn vào sản lượng và giá trị xuất khẩu thủy sản của cả nước. Trước những giá trị lợi nhuận cao do cá tra mang lại đã dẫn đến mức độ nuôi thâm canh tương đối cao và diện tích nuôi nhanh chóng được mở rộng. Dịch bệnh do vi khuẩn gây ra là một trong những trở ngại chính của mô hình nuôi thủy sản thâm canh (Kohler, 2000). Để điều trị bệnh do vi khuẩn, người nuôi thường sử dụng kháng sinh. Tuy nhiên, việc sử dụng kháng sinh trong việc điều trị bệnh tạo ra một hệ lụy nghiêm trọng là sự tồn dư của kháng sinh trong cơ thịt cá ảnh hưởng đến người tiêu dùng, dễ tạo ra những dòng vi khuẩn kháng thuốc và có thể làm tác động đến môi trường, hệ sinh thái của khu vực (Sarter và ctv, 2007). Điều này dẫn đến việc điều trị bệnh ngày càng gặp nhiều khó khăn. Vì vậy, việc duy trì tình trạng sức khỏe tốt của động vật thủy sản nuôi thông qua việc quản lý tốt ao nuôi và sử dụng những hợp chất có hoạt tính sinh học như Mannan oligosaccharide (MOS), Galacto-oligosaccharide (GOS), Fructo-oligosaccharide (FOS) nhằm hạn chế việc sử dụng kháng sinh đang là xu hướng phổ biến hiện nay trên thế giới và ở Việt Nam. Actigen TM là sản phẩm của công ty Alltech, thành phần chứa mannan oligosaccharide được ly trích từ tế bào nấm men Saccharomyces cerevisiae. Đây là chất có hoạt tính sinh học, tác dụng điều chỉnh khả năng đáp ứng miễn dịch, cải thiện tăng trưởng và hiệu quả sử dụng thức ăn (Miguel và ctv, 2004). Đã có nhiều nghiên cứu đánh giá việc bổ sung Actigen vào các loài vật nuôi. Tuy nhiên, hiện tại chưa có nghiên cứu về tác động của Actigen đối với cá tra. Xuất phát từ thức tế đã nêu ở trên, chúng tôi thực hiện đề tài nghiên cứu với mục tiêu đánh giá ảnh hưởng của mannan oligosaccharide trong sản phẩn Actigen TM lên tốc độ tăng trưởng, cải thiện sức khỏe cá tra và khả năng miễn dịch của cá tra (Pangasianodon hypophthalmus). 2. VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP Sản phẩm Actigen Sản phẩm Actigen TM do công ty Alltech sản xuất, thành phần chứa mannan oligosaccharide được ly trích từ tế bào nấm men Saccharomyces cerevisiae. Tác dụng chính của sản phẩm giúp điều chỉnh khả năng đáp ứng miễn dịch, cải thiện tăng trưởng và hiệu quả sử dụng thức ăn. Trong thí nghiệm, thức ăn ép đùn chứa 28% protein sẽ được sử dụng. Actigen sẽ được bổ sung vào thức ăn theo các tỷ lệ: không bổ sung (ĐC); 400 g/tấn (A1); 800 g/tấn (A2) và 1200 g/tấn (A3). Cá thí nghiệm Cá tra (Pangasianodon hypophthalmus) giống khỏe mạnh, sạch bệnh, có trọng lượng trung bình 10,78 ± 0,04 g được sử dụng trong nghiên cứu này. Cá sau khi mua về được trữ trong bể xi măng, cho ăn thức ăn công nghiệp trong vòng 15 ngày để thích nghi với điều kiện môi trường và ổn định sức khỏe trước khi bố trí thí nghiệm. Thí nghiệm 1 Thí nghiệm này được thiết lập để so sánh ảnh hưởng của Actigen lên sự tăng trưởng, tỷ lệ sống, hiệu quả sử dụng thức ăn và khả năng miễn dịch của cá tra ở các nghiệm thức bổ sung Actigen với tỷ lệ khác nhau (không bổ sung (ĐC); 400 g/tấn (A1); 800 g/tấn (A2) và 1200 g/tấn (A3) ). Cá thí nghiệm được bố trí theo kiểu khối hoàn toàn ngẫu nhiên vào 4 bể xi măng (2 x 3 x 1,5 m). Bố trí 16 giai (1 x 1 x 1 m) trong 4 bể xi măng cho 4 nghiệm thức (NT) với 4 lần lặp lại với mật độ 100 cá/giai. Cho cá ăn trong vòng 10 tuần. Trong quá trình thí nghiệm tiến hành thay nước 2 lần/tuần và mỗi lần thay 1/3 lượng nước trong bể kết hợp với xi phông đáy. Cá được cho ăn với thức ăn thí nghiệm trong 10 tuần. Sau đó cân trọng lượng và đếm số lượng để đánh giá tỷ lệ sống, tăng trọng, hiệu quả sử dụng thức ăn, và đánh giá các chỉ tiêu về đáp ứng miễn dịch không đặc hiệu của cá (bạch cầu và hoạt lực của lysozyme trong huyết thanh). Thí nghiệm 2 Sau khi kết thúc thí nghiệm 1, 25 cá/giai sẽ được chọn ngẫu nhiên để tiến hành thí nghiệm 2. Thí nghiệm 2 được tiến hành nhằm đánh giá ảnh hưởng của Actigen lên khả năng bảo hộ các gây nhiễm với vi khuẩn Edwardsiella ictaluri. Bố trí thí nghiệm gồm 4 nghiệm thức, mỗi nghiệm thức có 4 lần lặp lại, tương ứng sẽ có 16 bể bố trí ngẫu nhiên. Cá được gây cảm nhiễm bằng phương pháp ngâm với Edwardsiella ictaluri trong vòng 1 giờ. Mật độ vi khuẩn gây nhiễm là 10 6 cfu/ml. Sau khi ngâm, cá sẽ được chuyển vào nuôi trong bể composite (80 lít). Theo dõi tỷ lệ chết 2 lần/ngày trong vòng 14 ngày. Phương pháp phân tích và xử lý số liệu Tất cả các số liệu thu thập được sau thí nghiệm sẽ được tính toán bằng phần mềm Microsofl Excel 2007 và phân tích thống kê bằng phần mềm Minitab 15, sử dụng two-way ANOVA, kiểm định sự khác nhau giữa các nghiệm thức bằng trắc nghiệm Turkey với mức ý nghĩa P < 0,05. 3. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN Thí nghiệm 1 Tăng trưởng, hiệu quả sử dụng thức ăn và tỷ lệ sống của cá Bảng 1: Tăng trưởng và hệ số chuyển đổi thức ăn và tỷ lệ sống của cá sau 10 tuần thí nghiệm Nghiệm thức ĐC A1 A2 A3 Giá trị P W 1 (g/cá) 10,76 ± 0,59 a 10,53 ± 0,32 a 10,79 ± 0,10 a 10,82 ± 0,06 a 0,38 W 2 (g/cá) 63,76 ± 2,75 a 71,54 ± 9,52 ab 74,81 ± 3,94 b 79,81 ± 7,40 b 0,01 SGR (%/ngày) 2.50 ± 0,07 a 2,68 ± 0,22 ab 2,74 ± 0,62 b 2,85 ± 0,13 b 0,01 FCR 1,18 ± 0,04 a 1,16 ± 0,03 a 1,15 ± 0,01 a 1,14 ± 0,02 a 0,06 Lượng ăn 0,89 ± 0,03 a 1,00 ± 0,07 ab 1,04 ± 0,06 ab 1,12 ± 0,06 b 0,02 (g/cá/ngày) Tỷ lệ sống 97,50 ± 3,79 a 98,00 ± 2,31 a 98,50 ± 1,92 a 99,50 ± 1,00 a 0,66 Ghi chú: W 1 : trọng lượng cá trung bình đầu thí nghiệm (g/cá); W 2 : trọng lượng cá trung bình cuối thí nghiệm (g/cá); SGR: tốc độ tăng trưởng đặc biệt (%/ngày); FCR: hệ số biến đổi thức ăn. Các giá trị trên cùng một hàng nếu chứa các ký tự giống nhau thì khác nhau không có ý nghĩa về mặt thống kê (P > 0,05). Kết quả ở bảng 1 cho thấy, trọng lượng cá ban đầu ở các nghiệm thức (NT) khác biệt không có ý nghĩa về mặt thống kê (P > 0,05). Tuy nhiên, sau 10 tuần thí nghiệm trọng lượng cuối có sự khác biệt ý nghĩa. Trọng lượng trung bình của cá ở NT A3 là lớn nhất (79,81g/con), và trọng lượng giảm dần đến NT A2 (74,81 g/con), NT A1 (71,54 g/con) và thấp nhất ở NT ĐC (63,76 g/con). Sự khác biệt giữa NT ĐC và NT A1, giữa NT A1 và NT A2, giữa NT A2 và NT A3 là không có ý nghĩa về mặt thống kê (P > 0,05). Chỉ có sự khác biệt giữa NT ĐC và NT A2, giữa NT ĐC và NT A3 là có ý nghĩa về mặt thống kê (P < 0,05). Tỷ lệ tăng trưởng đặc biệt tăng dần từ NT ĐC (2,50 %/ngày) đến NT A3 (2,85 %/ngày). Sự khác biệt giữa NT ĐC và NT A2, giữa NT ĐC và NT A3 là có ý nghĩa về mặt thống kê (P < 0,05). Còn sự khác biệt giữa các NT còn lại là không có ý nghĩa về mặt thống kê (P > 0,05). Lượng ăn có khuynh hướng tăng đối với các NT có bổ sung Actigen. Tuy nhiên chỉ có sự khác biệt giữa NT ĐC và NT A3 mới có ý nghĩa về mặt thống kê (P < 0,05), còn sự khác biệt giữa các NT còn lại là không có sự khác biệt. Điều này cho thấy việc bổ sung Actigen vào thức ăn có khả năng giúp cá tăng trưởng tốt hơn và kích thích cá ăn được nhiều hơn. Về tỷ lệ sống có xu hướng tăng dần từ NT ĐC đến NT A3. Tuy nhiên sự khác biệt này không có ý nghĩa về mặt thống kê giữa 4 NT (P > 0,05). Hệ số biến đổi thức ăn có khuynh hướng giảm với các liều bổ sung Actigen nhưng không có sự khác biệt về mặt thống kê (P > 0,05). Điều này chứng tỏ việc bổ sung Actigen chưa mang lại hiệu quả rõ ràng lên hiệu quả sử dụng thức ăn của cá tra. Sản phẩm Actigen TM chứa thành phần mannan oligosaccharide (MOS). Đây là chất có hoạt tính sinh học, tác dụng điều chỉnh khả năng đáp ứng miễn dịch, cải thiện tăng trưởng và hiệu quả sử dụng thức ăn (Miguel và ctv, 2004). Đã có nhiều nghiên cứu trước đó chứng minh tác dụng của MOS lên khả năng tăng trưởng của động vật trên cạn cũng như trên các loài thủy sản. Kết quả nghiên cứu của thí nghiệm trên phù hợp với kết quả nghiên cứu trên các loài cá khác. Samrongpan và ctv (2008) nghiên cứu về ảnh hưởng của MOS lên tăng trưởng, tỷ lệ sống của cá rô phi bột (Oreochromis niloticus). MOS được bổ sung vào thức ăn với các liều lượng khác nhau và cho cá rô phi bột ăn trong vòng 21 ngày. Kết quả cho thấy, cá cho ăn thức ăn với các mức độ bổ sung MOS giúp gia tăng trọng lượng, chiều dài và tăng trọng trung bình hằng ngày (P < 0,05). Tuy nhiên không có sự khác biệt về FCR và tỷ lệ sống giữa các nghiệm thức bổ sung so với nghiệm thức đối chứng (P > 0,05). Theo Hanley và ctv (1995), thức ăn có bổ sung 0,6% MOS giúp cải thiện năng suất của cá rô phi đỏ. Thí nghiệm trên cá chép cho thấy thức ăn bổ sung 0,24% MOS sẽ giúp gia tăng tốc độ tăng trưởng và cải thiện FCR (Zhou và Li, 2004). Theo Staykov và ctv (2005), bổ sung hàm lượng 0,2% Bio-Mos vào thức ăn cá hồi, kết quả cho thấy tỷ lệ tăng trưởng tăng lên 13,7%, FCR giảm 0,83, tỷ lệ chết giảm 0,58 (P < 0,01). Bogut và ctv (2006) nghiên cứu trên cá da trơn Châu Âu Silurus glanis với khẩu phần có bổ sung MOS vào thức ăn cho kết quả cải thiện tăng trưởng, FCR và tỷ lệ chết giảm xuống so với lô đối chứng. Theo Che và ctv (2011), khi thức ăn có bổ sung 0,04% Actigen giúp gia tăng khả năng tăng trưởng và hiệu quả sử dụng thức ăn của heo thí nghiệm. Số lượng bạch cầu của cá sau thí nghiệm Bạch cầu đơn nhân, đại thực bào, bạch cầu hạt trung tính là các tế bào miễn dịch không đặc hiệu trên cá. Nhiệm vụ chính của bạch cầu là chống lại sự xâm nhập của vi khuẩn vào cơ thể, mỗi loại bạch cầu có một chức năng riêng (Nguyễn Văn Tư, 2007). Kết quả về số lượng bạch cầu đếm được trong các mẫu máu cá tra sau 10 tuần thí nghiệm được thể hiện qua bảng 2. Kết quả cho thấy số lượng bạch cầu đếm được ở NT A2 là cao nhất, kế đến là NT A3, NT A1 và thấp nhất là NT ĐC. Tuy nhiên, sự khác biệt giữa NT ĐC và NT A1, NT ĐC và NT A3, NT A1 và NT A3 là không có ý nghĩa về mặt thống kê (P > 0,05). Còn sự khác biệt giữa NT ĐC và NT A2 là có ý nghĩa về mặt thống kê (P < 0,05). Điều này chứng tỏ ở mức bổ sung 800g Actigen/tấn thức ăn cho tác dụng tốt nhất trong việc kích thích và làm gia tăng hoạt động của bạch cầu. Bảng 2: Số lượng bạch cầu đếm được trong các mẫu máu cá tra thí nghiệm Nghiệm thức Tổng số lượng bạch cầu (x10 3 tế bào/mm 3 ) ĐC 79,43 ± 18,32 a A1 84,89 ± 9,56 ab A2 101,21 ± 19,59 b A3 99,13 ± 17,68 ab Giá trị P 0,02 Ghi chú: Các giá trị trên cùng một cột nếu chữa các ký tự giống nhau thì khác nhau không có ý nghĩa về mặt thống kê (P > 0,05). MOS có khả năng kháng nguyên cao nhờ vào thành phần mannan và glucan trong cấu tạo phân tử. Thành phần kháng nguyên chính của tế bào nấm men là mannan được phân lập từ vách tế bào (Ballou, 1970). Mannan đã được chứng minh là có khả năng tạo ra phản ứng kháng nguyên trên con người (Young và ctv, 1998). Vì vậy, một số tương tác giữa MOS – hệ miễn dịch trên vật nuôi dự đoán sẽ xảy ra (Ferket và ctv, 2002). Nghiên cứu của Swanson và ctv (2002) bổ sung hàm lượng 1 g MOS vào thức ăn cho chó cái trưởng thành, cho chó ăn liên tục trong vòng 14 ngày. Kết quả cho thấy, tổng số tế bào bạch cầu và phần trăm lympho bào có xu hướng gia tăng với liều bổ sung MOS. Nghiên cứu của Che và ctv (2011) thức ăn có bổ sung 0,04% Actigen giúp gia tăng tế bào bạch cầu, tế bào lympho, và bạch cầu trung tính trên lợn. Trong thí nghiệm này, bổ sung 0,08% Actigen giúp gia tăng tổng lượng bạch cầu trên cá tra. Hoạt lực lysozyme trong huyết thanh Lysozyme hiện diện trong huyết thanh và màng nhầy của cá nhưng nó được đặc biệt kết hợp với bạch cầu và các mô giàu bạch cầu. Bạch cầu đơn nhân, đại thực bào và bạch cầu trung tính được cho là nguồn gốc chính của lysozyme (Murray và Fletcher, 1976). Lysozyme là một thành phần quan trọng của đáp ứng miễn dịch không đặc hiệu, là một chỉ số hữu ích (Kiczka, 1994; Bayne và Gerwick, 2001). Bảng 3: Hoạt lực lysozyme trong huyết thanh của cá thí nghiệm Nghiệm thức Sự giảm mật độ quang (x10 -2 ) Hoạt lực của lysozyme (unit/mL) ĐC 4,6 ± 0,00 a 118,75 ± 4,79 a A1 6,2 ± 0,01 ab 155,00 ± 32,3 ab A2 5,2 ± 0,00 ab 130,00 ± 11,55 ab A3 6,6 ± 0,01 b 164,38 ± 15,73 b Giá trị P 0,02 0,02 Ghi chú: Các giá trị trên cùng một cột nếu chữa các ký tự giống nhau thì khác nhau không có ý nghĩa về mặt thống kê (P > 0,05). Hoạt lực của lysozyme có sự gia tăng ở những lô bổ sung Actigen nhưng sự gia tăng không đồng đều. Hoạt lực lysozyme cao nhất ở NT A3 (164,38 unit/mL) và thấp nhất là NT ĐC (118,75 unit/mL). Sự khác biệt giữa NT ĐC và NT A3 là có ý nghĩa về mặt thống kê (P < 0,05). Còn sự khác biệt giữa các NT còn lại là không có sự khác biệt về mặt thống kê (P > 0,05). Sự suy giảm mật độ quang là do hoạt động của lysozyme. Lysozyme hoạt động càng mạnh, số lượng tế bào Gram dương bị phá vỡ càng nhiều, do đó mật độ quang cũng giảm nhiều hơn. Ở NT A3 có sự giảm mật độ quang cao nhất và có ý nghĩa về mặt thống kê (P < 0,05). Điều này chứng tỏ việc bổ sung 1200 g Actigen/tấn thức ăn cho kết quả kích thích hoạt động của lysozyme tốt nhất. Staykov và ctv (2006) nghiên cứu về ảnh hưởng của MOS lên tăng trưởng và tình trạng miễn dịch của cá hồi vân (Salmo gairdneri irideus G) và cá chép (Cyprinus carpio L). MOS được bổ sung với liều 2kg/tấn thức ăn. Kết quả cho thấy, hoạt lực lysozyme được gia tăng ở liều bổ sung MOS (P < 0,05). Thí nghiệm trên cá chép Jian cho kết quả gia tăng hoạt lực của lysozyme khi cá ăn thức ăn có bổ sung MOS (Zhou và Li, 2004). Thí nghiệm 2 Đồ thị: Tỷ lệ sống của cá sau khi gây cảm nhiễm bởi E. ictaluri Ở các nghiệm thức thí nghiệm, kết quả cho thấy cá có biểu hiện đặc trưng của bệnh gây ra do E. ictaluri. Tiến hành phân lập và định danh vi khuẩn cho thấy, chỉ xuất hiện khuẩn lạc của vi khuẩn E. ictaluri trên môi trường nuôi cấy BHIA. Điều này chứng tỏ cá chết ở các nghiệm thức là do vi khuẩn này gây ra. Qua đồ thị cho thấy, từ ngày thứ 4 trở đi, cá bắt đầu chết ở các lô thí nghiệm. Và đến ngày thứ 11 cá bắt đầu ngưng chết. NT ĐC có tỷ lệ cá chết cao nhất, kế đến là NT A1, NT A2 và chết thấp nhất là NT A3. Bảng 4 thể hiện tỷ lệ sống trung bình của cá tra sau khi kết thúc thí nghiệm. Bảng 4: Tỷ lệ sống của cá tra sau 14 ngày gây cảm nhiễm bởi vi khuẩn E. ictaluri. Nghiệm thức Tỷ lệ sống (%) ĐC 17,00 ± 8,87 a A1 19,00 ± 7,57 a A2 26,00 ± 2.31 a A3 31,00 ± 8,25 a Giá trị P 0,11 Ghi chú: Các giá trị trên cùng một cột nếu chữa các ký tự giống nhau thì khác nhau không có ý nghĩa về mặt thống kê (P > 0,05). Tỷ lệ sống của cá kết thúc thí nghiệm cảm nhiễm với E. ictaluri (Bảng 4) có xu hướng tăng theo liều bổ sung Actigen, thấp nhất ở NT ĐC (17%), cao nhất là 31% thuộc NT A3. Tuy nhiên, sự khác biệt giữa các NT là không có ý nghĩa về mặt thống kê (P > 0,05). Qua thí nghiệm này, việc bổ sung MOS (Actigen) vào thức ăn giúp gia tăng tỉ lệ sống của cá khi gây cãm nhiễm với vi khuẩn E. ictaluri nhưng tác dụng giúp tăng khả năng đề kháng của cá tra đối với vi khuẩn này chưa rõ ràng. Kết quả này cũng phù hợp với kết quả nghiên cứu của Brian và ctv (2009), bổ sung 2 g MOS/kg thức ăn và cho cá da trơn Mỹ ăn trong vòng 4 tuần, sau đó gây cảm nhiễm với Edwardsiella ictaluri, kết quả tỷ lệ sống không có sự khác biệt ý nghĩa giữa nghiệm thức bổ sung MOS và nghiệm thức đối chứng. Trong thí nghiệm của chúng tôi, rõ ràng bổ sung Actigen liều lượng 0,08%-0,12% vào thức ăn giúp gia tăng liều lượng bạch cầu và lysozymes, gia tăng hệ miễn dịch không đặc hiệu trên cá tra giúp cá gia tăng khả năng chống lại bệnh gan thận mũ gây ra do vi khuần Edwardsiella ictaluri. Nhưng hệ miễn dịch không đặc hiệu chỉ giúp gia tăng sức khỏe giúp làm giãm tỉ lệ chết khi gây cãm nhiễm và trong thí nghiệm này do mật độ vi khuẩn gây bệnh cao nên tỉ lệ chết của các nghiệm trên 50% nên khả năng bảo hộ của các lô bổ sung Actigen không thấy rõ so với lô đối chứng. 4. KẾT LUẬN Thức ăn bổ sung 800 và 1200 g Actigen/tấn thức ăn ảnh hưởng tốt giúp gia tăng tăng trưởng của cá tra (P < 0,05). Lượng thức ăn gia tăng ý nghĩa so với đối chứng ở liều bổ sung 1200g Actigen/tấn. Tuy nhiên hệ số thức ăn không khác nhau ý nghĩa ở các nghiệm thức dù có khuynh hường giãm khi bổ sung các liều Actigen vào thức ăn. Bổ sung Actigen giúp gia tăng hệ miễn dịch không đặc hiệu trên cá tra: 1200 g Actigen/tấn thức ăn giúp gia tăng hoạt lực của lysozyme (P < 0,05) và 800 g Actigen/tấn thức ăn hoạt hóa bạch cầu tốt hơn so với đối chứng (P < 0,05). Khi gây cãm nhiễm với vi khuẩn Edwardsiella ictaluri, tỷ lệ sống của cá tra sau 14 ngày gây cãm nhiễm có khuynh hướng gia tăng với các liều bổ sung Actigen nhưng không có sự khác biệt có nghĩa so với đối chứng (P > 0,05). Sự gia tăng hệ miễn dịch không đặc hiệu trên cá tra khi bổ sung Actigen chưa đủ hiệu quả để bảo vệ cá khi mật độ vi khuẩn gây bệnh trong môi trường quá cao gây chết với tỷ lệ trên 50%. TÀI LIỆU THAM KHẢO Ballou C.E., 1970. A study of the immunochemistry of three yeast mannans. J Biol Chem 245(5): 1197-1203. Bayne C.J. and Gerwick L., 2001. The acute phase response and innate immunity of fish. Developmental and Comparative Immunology 25:725-743. Bogut I., Milakovic Z., Pavlicevic J., Petrovic D., 2006. Effect of Bio-Mos ® on performance and health of European catfish. In: Nutrition and biotechnology in the feed and food industries: Alltech’s 22 nd annual symposium (suppl. 1) (abstracts of posters presented). Lexington, KY, USA. Brian C., Tyler C., Bruce B., 2009. Effects of of Bio-Mos ® on growth and survival of channel catfish challenged with Edwardsiella ictaluri. Journal of the world aquaculture society 41(1): 149-155. Che T.M., Song M., Johnson R.W., Kelley K.W. and Van Alstine W.G., 2011. Actigen TM improves growth efficiency and immune responses in pigs experimentally infected with PRRS virus. Science and Technology in the Feed Industry: Alltech’s 27 th International symposium (conclusion of posters presented). Lexington, KY, USA, May 22-25. Hanley F., Brown H., Carbery J., 1995. First observations on the effects of mannan oligosaccharide added to hatchery diets for warmwater Hybrid Red Tilapia. Poster presented at the 11th annual symposium on biotechnology in the feed industry. Lexington, KY, USA. Hossu B., Salnur S. and Gultepe N., 2005. The effects of yeast derivatives (Bio-Mos ® ) on growth of Gilthead sea bream, Sparus aurata. Nutritional Biotechnology in the Feed & Food Industries: Proceedings of Alltech’s 21st Annual Symposium (Suppl. 1) (Abstracts of posters presented). Lexington, KY, May 23-25. Kiczka W., 1994. From lysozyme monomer to lysozyme dimer. Zycie Weterynaryjne 4A:131-136. Kohler C.C., 2000. Striped bass and hybrid striped bass culture. In: Encyclopedia of Aquaculture (Eds. Tickney R.R.). Wiley, New York, USA, pp. 898– 907. Miguel JC., Rodriguez-Zas SL., Pettigrew JE., 2004. Efficacy of a mannan oligosaccharide (Bio- Mos ® ) for improving nursery pig performance. J Swine Health Prod. 12(6):296–307. Murray C.K. and Fletcher T.C., 1976. The immunohistochemical localisation of lysozyme in plaice (Pleuronectes platessa L.) tissuse. J. Fish Biology 9: 329-334. Nguyễn Văn Tư, 2007. Bài giảng Sinh lý cá và giáp xác. Đại học Nông Lâm, TP. Hồ Chí Minh, 142 trang. Samrongpan C., Areechon N., Yoonpundh R. and Srisapoome P., 2008. Effectc of mannan- oligosaccharide on growth, survival and disease resistance Nile tilapia (Oreochromis niloticus Linnaeus) fry. International Symposium on Tilapia in Aquaculture 8: 345-353. Sarter S., Kha N.H.N., Hung L.T, Lazard J. and Diditier M., 2007. Antibiotic Resistance in Gram-negative bacteria isolated from farmed catfish. Food Control 18: 1391 – 1396. Staykov Y., Denev S., Spring P., 2005. Influence of dietary mannan oligosaccharides (Bio-Mos ® ) on growth rate and immune function of common carp (Cyprinus carpio L.). In: Howell B, Flos R (eds) Lessons from the past to optimise the future. European Aquaculture Society, Special Publication. 35: 431–432. Staykov Y., Spring P., Denev S. Influence of dietary Bio-Mos ® on growth, survival and immune status of rainbow trout (Salmo gairdneri irideus G.) and common carp (Cyprinus carpio L.). Bulgaria: Trakia University; 2006. Staykov Y., Spring P., Denev S. and Sweetman J., 2007. Effect of a mannan oligosaccharide on the growth performance and immune status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquacult. Int., 15, 153-161. Swanson K.S., Grieshop C.M., Flickinger E.A., Bauer L.L., Healy H.P., Dawson K.A., Merchen N.R. and Fahey G.C., 2002. Supplemental fructooligosaccharides and mannanoligosaccharides influence immune function, ileal and total tract nutrient digestibilities, microbial populations and concentrations of protein catabolites in the large bowel of dogs. J Nutr 132: 980-989. Torrecillas S., Makol A., Caballero M. J., Montero D., Robaina L., Real F. and Sweetman J., 2007. Immune stimulation and improved infection resistanxe in European sea bass (Dicentrarchus labrax) fed mannan oligosaccharides. Fish & Shellfish Immunology, 23, 969-981. Young M., Davies M.J., Bailey D., Gradwell M.J., Smestad-Paulsen B., Wold J.K., Barnes R.M.R., and Hounsell E.F., 1998. Characterization of oligosaccharides from an antigenic mannan of Saccharomyces cerevisiae. Glycoc J 15: 815-822. Zhou XQ., Li Y-L., 2004. The effects of Bio-Mos ® on intestinal microflora and immune function of juvenile Jian carp (Cyprinus carpio Var. Jian). In: Nutritional biotechnology in the feed and food industries: Proceedings of Alltech’s 20 th annual symposium (Suppl. 1—Abstracts of posters presented), Lexington, KY, USA. ABSTRACT The effects of dietary MOS (Actigen TM , Alltech, USA) on the growth, survival, fish health improvement of tra catfish were evaluated. Experimental diets were prepared by using supplementation of 0 (Control), 400 (A1), 800 (A2), 1200 g Actigen ton -1 (A3) commercial tra catfish diet containing 28% protein. A tra catfish with an average weight of 10,78 ± 0,04 g was cultured in hapas (1 x 1 x 1 m) at a stocking density of 100 fish/hapa. The experiment consisted of four treatments with four replicates. The trial was aimed to evaluate effect of Actigen on growth performances, feed utilization and non-specific immune response of fish. At the end of 10 weeks of rearing period, A2 feed supplied 800 g Actigen ton -1 and A3 feed supplied 1200 g Actigen ton -1 increased significantly growth performances, specific growth rate (SGR) (P < 0,05). However, fish fed the Actigen supplement could not improve food conversion ratio (FCR) and survival rates (P > 0,05). Feed intake in Actigen supplementing feed treatments tends to increase when compared to the control (significant improvement in treatment A3 (P < 0,05)). Non-specific immune response including lysozyme activity and density of white blood cells of fish were evaluated. Treatment A3 (800 g Actigen ton -1 ) enhanced significantly lysozyme activity, and treatment A2 increased significantly the density of white blood cells (P < 0,05). At the end of the trial, fish fed different feed in 10 weeks were challenged with Edwardsiella ictaluri bacteria by immersion. Mortality was observed twice per day, for 14 days. There were a tendency of increased survival rates in Actigen supplement fish when compared to the control but no significant differences among treatments (P > 0,05). It seems that Actigen has improved the non specific immune systems in fish fed 800-1200g Actigen.ton -1 ; however, when challenged with high bacteria solution, the health improvement had a tendency to be improved with Actigen supplementation but no significant differences among treatments . ẢNH HƯỞNG CỦA MANNAN OLIGOSACCHARIDE TRONG SẢN PHẨM ACTIGEN TM LÊN KHẢ NĂNG TĂNG TRƯỞNG VÀ CẢI THIỆN SỨC KHỎE CÁ TRA (Pangasianodon hypophthalmus) Đào. độ tăng trưởng, cải thiện sức khỏe cá tra và khả năng miễn dịch của cá tra (Pangasianodon hypophthalmus). 2. VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP Sản phẩm Actigen Sản phẩm Actigen TM do công ty Alltech sản. ứng miễn dịch, cải thiện tăng trưởng và hiệu quả sử dụng thức ăn (Miguel và ctv, 2004). Đã có nhiều nghiên cứu trước đó chứng minh tác dụng của MOS lên khả năng tăng trưởng của động vật trên