2.8. Vấn đề chăm sóc, quản lý Hầu hết các vấn đề phát sinh trong nhà giống đều do nguyên nhân quản lý kém (New và Shigolka, 2000). 2.8.1. Cho ăn Một khía cạnh không kém phần quan trọng trong sản xuất giống tôm càng xanh đó là kỹ thuật cho ăn (New và Valenti, 2000) bởi vì thức ăn đóng vai trò quan trọng quyết định đến tỷ lệ sống, biến thái cũng như môi trường nước ương (Trần Thị Thanh Hiền và ctv, 2003). Có 2 loại thức ăn được dùng, đó là nauplius Artemia và thức ăn chế biến (New và Shingolka, 1985). Thức ăn chế biến có nhiều công thức phối chế rất khác nhau, nhưng chủ yếu gồm các loại nguyên liệu sau: thịt tôm, thị mực, trứng cá, dầu cá, các vitamine và khoáng chất (New và Shingolka, 1985). Việc cho ăn nên đảm bảo đầy đủ để tránh ấu trùng đói, chúng sẽ ăn thịt lẫn nhau. Tuy nhiên nếu thừa nhiều thức ăn (nhất là thức ăn chế biến) sẽ làm nước bể ương bị dơ, làm cơ sở cho mầm bệnh tấn công (New và Shingolka, 1985). 2.8.2. Vệ sinh Đảm bảo bệ sinh tốt sẽ góp phần ngăn ngừa dịch bệnh (New và Valenti, 2000). Nước thay được xử lý kém hay vệ sinh kém là nguyên nhân xuất hiện nấm (Zoothanium), ký sinh (Epistylis), hydroid (thuỷ tức) có ảnh hưởng bất lợi tới ấu trùng. (New và Valenti, 2000). Theo như đề xuất của New và Shingolka (1985) thì mỗi bể nên có dụng cụ vệ sinh riêng. Các bể nên được vệ sinh, khử trùng giữa hai chu kỳ ương theo quy trình. Cọ rữa bể, xử lý bằng 1,5 ppm chrorine. Phun 250 ppm formaline, phơi dưới ánh nắng mặt trời rồi rữa lại. Nếu không thực hiện tốt việc vệ sinh sẽ làm phát triển rộ các vi sinh vật trên. 2.9. Tạo đàn tôm toàn đực bằng kỹ thuật vi phẩu 2.9.1. Ưu thế của việc sản xuất đàn toàn đực Một trở ngại lớn trong nuôi tôm càng xanh thương phẩm là sự phân đàn khi nuôi chung tôm đực và tôm cái. Tôm đực thường lớn nhanh hơn tôm cái trong một quần đàn (Ra’anna và Sagi, 1986). Trở ngại này làm ảnh hưởng đáng kể đến kích cỡ và sản lượng tôm thương phẩm (Smith và ctv, 1978; Brody và ctv, 1980; Cohen và ctv, 1981; Sagi và ctv, 1986; Nguyễn Vệt Thắng, 1993) trích dẫn bởi Nguyễn Văn Hảo và ctv, 2004. Với sự cố gắng bước đầu trong sản xuất đàn tôm càng xanh toàn đực của Sagi, Ra’anan, Cohen và Wax (1986) trên quy mô nuôi nhỏ đã cho thấy khả năng sản xuất cao của đàn toàn đực sau 150 ngày nuôi. Năng suất đạt 473 g/m 2 của đàn toàn đực so với 248 – 260 g/m 2 của đàn tôm bình thường có hỗn hợp đực cái. Việc sản xuất đàn toàn đực cho năng suất cao và đạt kích cỡ thương mại nhanh hơn (Sagi và Aflalo, 2005). Sau đó Cohen, Sagi, Ra’anan và Zohar (1988) thực hiện việc thử nghiệm nuôi đàn toàn đực tập trung trong ao đất (Sagi và Aflalo, 2005) và cho thấy đàn toàn đực cho năng suất thương mại cao, gia tăng trọng lượng trung bình, lợi nhuận thu được cũng tăng 18% ở Israel. 2.9.2. Vai trò của tuyến đực trong xác định giới tính ở tôm càng xanh Không giống như các loài động vật có xương sống, ở giáp xác đực chức năng nội tiết và sinh giao tử phân biệt thành 2 cơ quan rõ rệt: tuyến đực (androgenic gland) và sinh tinh trùng (testis) (Ginburger-Vogel  Charniaux – Cotton 1982; Charniaux – Cotton  Payen 1988) trích bởi Sagi và Aflalo (2005). Năm 1990, qua quá trình nghiên cứu, Sagi và ctv đã phát hiện ra tuyến đực có vai trò quan trọng đối với sự hình thành giới tính và các đặc điểm sinh dục phụ thứ cấp cũng như ảnh hưởng đến tốc độ tăng trưởng ở giáp xác. Năm 2000, Phạm Anh Tuấn và ctv làm thí nghiệm cắt tuyến sinh dục của tôm càng xanh giống cỡ 3 – 5 cm đã làm thay đổi cấu trúc sinh dục của tôm càng xanh. Theo tác giả thì cồn 96 0 có thể tác dụng phá hũy cấu trúc của tuyến đực và làm thay đổi một số đặc điểm sinh dục phụ trên tôm càng xanh đực. Theo nhiều tác giả (Nagamine, Knight, Maggesnti và Pax, 1980) tôm càng xanh đực đã được biệt hoá ở giai đoạn phát triển còn non. Điều này chứng tỏ tôm càng xanh đực có mức thuộc cái cao, bao gồm sự phát triển của vòi trứng và ống dẫn trứng (Sagi và Aflalo, 2005) khi chưa được biệt hoá đực. Ở tôm càng xanh, theo Veith và Malecha (1983) tuyến đực gồm một sợi các tế bào bao quanh bởi một lớp mô liên kết hình thành nên một cụm liên kết lỏng lẽo nằm phía sau của ống dẫn tinh (Sagi và Aflalo, 2005). Theo tác giả có thể thao tác loại tuyến đực mà không làm hư hại tuyến sinh dục này để ảnh hưởng đến sự biệt hoá giới tính sớm của tôm càng xanh. Năm 1990, Sagi và ctv đã ghi nhận tôm càng xanh giống loại bỏ tuyến đực đã chuyển đổi giới tính hoàn toàn thành con cái và phát triển thành tôm cái thật sự có khả năng giao vỹ và sinh ra thế hệ con 100% đực. 2.9.3. Cơ sở tạo đàn tôm toàn đực Nghiên cứu bộ gen trên tôm càng xanh của Malecha và ctv (1992) đã xác định được cặp nhiễm sắc thể giới tính của tôm càng xanh đực là đồng giao tử ZZ và của con cái là dị giao tử WZ (Sagi và Aflalo, 2005). Việc loại tuyến đực sẽ làm cho con đực có xu hướng cái hoá và có khả năng mang trứng. Khi đó tôm cái giả (kiểu gen ZZ) giao phối với tôm đực bình thường (kiểu gen ZZ) sẽ cho đàn toàn đực (kiểu gen ZZ). Ở Việt Nam, năm 2004, Nguyễn Văn Hảo và ctv đã nghiên cứu bước đầu sản xuất đàn toàn đực bằng kỹ thụât vi phẩu, tôm đực PL 30 – 60 ngày tuổi được chọn làm thí nghiệm, dùng kỹ thuật vi phẩu như mô tả của Sagi và Cohen (1990) để loại tuyến đực đạt được một số kết quả bước đầu. Trong 43 quần đàn phát hiện 7 quần đàn 100% toàn đực, 7 tôm cái giả có thể cho sản xuất toàn đực. Theo tác giả, sau vi phẩu tôm được thả nuôi và kiểm tra đàn con F 1 . Nếu F 1 100% toàn đực thì ta kết luận vi phẩu thành công và con cái tạo ra được gọi là cái giả. 2.10. Các qui trình nuôi tôm càng xanh trong sản xuất giống Hiện nay, các qui trình được sử dụng trong sản xuất giống tôm càng xanh (theo Nguyễn Việt Thắng, 1993) như: - Qui trình nước xanh hệ hở (do Fujimura nghiên cứu vào năm 1974) - Qui trình nước trong hệ hở (do Ling (1969) và Aquacop (1983)) - Qui trình nước trong hệ kín (được nghiên cứu từ năm 1977 đến năm 1986) 2.11. Qui trình nước trong hệ kín 2.11.1. Giới thiệu Được nghiên cứu từ năm 1977 đến năm 1986 qui trình căn bản được hoàn thiện và đưa vào sử dụng. Theo Nguyễn Việt Thắng (1993) đây là hệ thống ở đó nước nuôi được tái xử lý bằng các biện pháp xử lý nước (lọc cơ học, lọc sinh học, hấp thụ vật lý, tẩy uế, sục khí…) để tái sử dụng nguồn nước này. Trong tuần hoàn kín, hệ thống lọc sinh học là một hệ thống quan trọng nhất. Lọc sinh học được sử dụng chủ yếu để loại bỏ chất thải nitơ, chủ yếu từ ammonia do ấu trùng và thức ăn tươi (Artemia…) trong quá trình bài tiết và từ sự phân hủy vật liệu hữu cơ. Hình 2.4. Sơ đồ tác động của vi sinh vật trong hệ thống tuần hoàn. Nguồn: Nguyễn Việt Thắng (1996) Sản phẩm độc Khoáng hoá Nitrate hoá Sản phẩm vô hại Vi sinh vật Nước nuôi Hình 2.5. Sơ đồ qui trình nước tuần hoàn kín. Nguồn: Nguyễn Thị Thanh Thuỷ (2002) Về cơ bản việc ứng dụng qui trình nuôi tôm theo mô hình tuần hoàn kín mang lại một số ưu điểm là: tiết kiệm lượng nước nuôi, giảm thiểu tác hại của môi trường, tiết kiệm công sức lao động. Nhưng đây là qui trình khó, đòi hỏi trình độ kỹ thuật cao, trang thiết bị tốn kém và vốn đầu tư lớn (Nguyễn Việt Thắng, 1993; Nguyễn Thị Thanh Thuỷ, 2002). Và một trong các điểm yếu của qui trình này là nếu có sự cố xảy ra như bệnh trên một bể trong hệ thống thì nó sẽ lan truyền cho cả hệ thống nuôi. Một hạt hữu cơ rơi vào hệ lọc cũng có thể là nguyên nhân gây bệnh cho hệ thống (New và Shingolka, 1985). 2.11.2. Các quá trình sinh hóa xảy ra trong lọc sinh học 2.11.2.1. Quá trình khoáng hoá Là giai đoạn đầu tiên của quá trình lọc sinh hoc, các chất thải chứa nitơ được các vi khuẩn dị dưỡng hấp thụ và chuyển thành ammonia đơn giản. Sự khoáng hoá bằt đầu bằng việc phân giải các hợp chất protein và acid nucleic để tạo nên các acid amine và bazơ hữu cơ có chứa nitơ. Tiếp đó quá trình khoáng hoá sẽ khử amine bởi các vi khuẩn, trong đó một nhóm amino sẽ tách ra để hình thành ammonia. 2.11.2.2. Quá trình nitrate hoá Gây nuôi vi khuẩn Nitrosomonas Nitribacter Nước lợ 12‰ đã qua xử lý HỆ THỐNG BỂ ƯƠNG Post larvae Ngọt hóa 0‰ Ấu trùng Thức ăn Chăm sóc Phòng và kiểm soát bệnh THEO NHẬT KÝ SẢN XUẤT GIỐNG LỌC SINH HỌC CÂN BẰNG VỚI HỆ THỐNG ƯƠNG Sau đó, nhờ quá trình nitrate hóa, ammonia được chuyển thành dạng nitrate vô hại đối với ấu trùng của tôm (Spotte 1979). Kaiser, Wheatgon (1983) và Brock (1994) đã mô tả quá trình nitrate hóa ammonia bắt nguồn từ hoạt động của chuỗi vi khuẩn nitrate hóa. Nhóm đầu tiên oxi hóa ammonia thành NO 2 - , đại diện là giống Nitrosomonas và Nitrosococus. Nhóm thứ 2 oxi hóa NO 2 - thành NO 3 - , thuộc giống Nitrobacter, Nitrospira, Nitrococcus (Brock và ctv, 1994). Quá trình nitrate hóa liên quan đến cả sự oxi hóa và tổng hợp, kết quả dẫn đến việc tiêu thụ O 2 và loại bỏ tính kiềm. Nhóm vi khuẩn Nitrosomonas và Nitrobacter là các nhóm chính của những vi khuẩn tự dưỡng thực hiện sự nitrate hóa ở cả môi trường nước ngọt, nước lợ, nước mặn. Phương trình của sự nitrate hóa như sau : NH 4 + + OH - + 2 3 O 2 = H + + NO 2 - + H 2 0 (1) NO 2 - + 2 1 O 2 = NO 3 - (2) 2.11.2.3. Quá trình khử nitrate Ngoài ra trong hệ lọc sinh học còn có quá trình khử nitrate. Đây là một quá trình kỵ khí xảy ra ở phần bể lọc thiếu oxy bởi vi khuẩn kỵ khí thật sự hoặc là các loài hiếu khí chuyển sang hô hấp kỵ khí khi điều kiện thiếu oxy. Kết quả sự khử nitrate là đã chuyển nitơ về dạng oxy hóa thấp hơn (N 2 O, N 2 …). Ở trạng thái oxy hóa hoàn toàn (N 2 ), một số nitơ có thể tách khỏi dung dịch đi vào không khí, vì thế quá trình khử nitrate làm giảm lượng nitơ của dung dịch. Trong 3 quá trình sinh hóa quan trọng của sự lọc sinh học thì 2 quá trình khoáng hóa và nitrate hóa có ý nghĩa quan trọng cho việc ‘tái sinh nước’, giữ được chất lượng nước ổn định. Quá trình khử nitrate xảy ra ở những phần của bể lọc bị thiếu oxy và sản phẩm của quá trình này thường làm nhiễm bẩn môi trường. Vì vậy, hàm lượng oxy trong bể lọc rất có ý nghĩa. Nguồn : Nguyễn Việt Thắng (1996). 2.11.3. Vi sinh vật trong lọc sinh học Hai nhóm vi khuẩn chủ yếu cần thiết trong hệ lọc sinh học thuộc hai nhóm sinh vật dị dưỡng và tự dưỡng đặc biệt là nhóm vi khuẩn tự dưỡng Nitrosomonas và Nitrobacter là 2 nhóm quan trọng thực hiện quá trình nitrate hoá. Các vi khuẩn Pseudomonas… có ý nghĩa cho việc khử nitrate. Ngoài ra nười ta cũng nhận thấy sự có mặt của Protozoa, Amoeba, Rotifer, và một số lượng lớn Mematodes… Các vi sinh vật trong hệ lọc sống lơ lửng hoặc tạo thành một màng nhầy như một quần thể sinh vật. Màng nhầy này có vai trò chuyển NH 4 + và NO 2 - thành NO 3 - theo sơ đồ ở hình 2.6. Hình 2.6. Quá trình nitrate hoá ở màng nhầy sinh học Kết quả của quá trình nitrate hoá sẽ acid hoá môi trường vì sự hình thành H + (xem phương trình 1 và sơ đồ màng nhầy), vì vậy để ổn định pH môi trường, thường phải cung cấp vật liệu cho bể lọc các đá san hô, đá vôi tạo ra được Alkalinity (HCO 3 - ) để trung hoà H + : H + + HCO 3 -  CO 2  + H 2 O Người ta gọi đó là hệ thống đệm bicacbonate, nhờ đó mà môi trường nước nuôi giữ được độ kiềm ổn định. Nguồn: Nguyễn Việt Thắng (1996) NO 2 Màng nhầy NO 3 - O 2 NO 2 H + HCO 3 - Alkalinity H 2 O O 2 H 2 O CO 2 H 2 O Chương 3: VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP 3.5. Địa điểm nghiên cứu Thí nghiệm được thực hiện tại “Trại Thực Nghiêm Nuôi Thuỷ Sản Thủ Đức”- Phòng Sinh Học Thực Nghiệm (658 Kha Vạn Cân, Thủ Đức). Và “Trung Tâm Quan Trắc Môi Trường và Dịch Bệnh Thuỷ Sản” trực thuộc Viện Nghiên Cứu và Nuôi Trồng Thuỷ Sản II (116 Nguyễn Đình Chiểu, Quận 1) 3.6. Thời gian nghiên cứu Đề tài được thực hiện từ 7/3/2005 – 7/8/2005. 3.7. Vật liệu 3.7.1. Nguồn nước Sử dụng nguồn nước lấy từ giếng khoan và nguồn nước máy làm nguồn nước ngọt, nước biển được mang về từ Vũng Tàu. Hai nguồn nước này được xử lý và pha trộn để có độ mặn 12‰. 3.7.2. Ấu trùng Tôm mẹ mang trứng có nguồn gốc từ tôm đực đã được vi phẩu loại tuyến đực có khả năng mang trứng để sản xuất đàn ấu trùng dùng cho các thí nghiệm. Các tôm mẹ mang trứng xám được bắt từ bể nuôi tôm bố mẹ vào trong nhà giống để ấp. Ấu trùng nở ra sau 1 – 2 ngày được bố trí cho vào bể ương. 3.7.3. Nhà giống - Cấu trúc máy che bằng tole xi măng - Vách làm bằng bạc nhựa nilông - Nền được tráng xi măng 3.7.4. Bể Có 20 bể composite thể tích 100 lít dùng cho các thí nghiệm ương ấu trùng. Ngoài các bể ương ấu trùng còn có các bể chứa nước biển (10 m 3 ), bể xử lý nước 0,5 m 3 và 1 m 3 . Các xô ấp cho tôm mẹ mang trứng để thu ấu trùng, keo thuỷ tinh 10 lít để ấp Artemia. 3.7.5. Hệ lọc sinh học và hệ thống bể ương - 4 bể lọc san hô dung tích 0,5m 3 /bể - Máy tách đạm (fresh protein skimmer) - Máy tạo khí Ozon (O 3 ) - Hệ thống đường ống và dây dẫn khí - Hệ thống dường ống dẫn nước - Hệ thống đèn tròn chiếu sáng - Đá bọt sủi khí - Máy nén khí - Máy bơm - Vợt 3.7.6. Các vật liệu khác - Các loại hoá chất dung cho việc vệ sinh và xử lý nước hàng ngày: formol, Chlorine, thuốc kháng sinh,… - Kính hiển vi soi nổi với độ phóng đại quang học từ 10 – 100 lần - Đĩa Petri nhựa và thuỷ tinh - Môi trường TCBS - Đèn cồn, que cấy - Tủ ấm 37 0 C - Cồn 70 0 và 99 0 ,5 - Lọ nhựa để thu mẫu nước [...]... sống Đánh giá môi trường đầu vào và đầu ra của hệ lọc Ảnh hưởng của môi trường và tỷ lệ sống lên biến thái của ấu trùng Môi trường bể ương - Nhiệt độ - pH - NH3-N Đánh giá biến động môi trường bể ương Hiệu quả của hệ thống sản xuất giống bằng phương pháp lọc tuần hoàn Kết luận và đề xuất Hình 3. 1: Sơ đồ bố trí thí nghiệm 3.8 .2 Sơ đồ bố trí và vận hành hệ thống 3.8 .2. 1 Bố trí hệ thống lọc tuần hoàn - Hệ. .. thích: Đường ống dẫn nước từ bể ương qua hệ lọc Đường ống dẫn nước đã qua hệ lọc vào bể ương Hình 3. 2: Sơ đồ bố trí hệ lọc tuần hoàn và hệ thống bể ương 3.8 .2. 2 Cách vận hành hệ thống tuần hoàn Nước được tuần hoàn từ bể ương qua hệ lọc làm sạch rồi cấp trở lại cho bể ương Ấu trùng nhỏ hơn 5 ngày tuổi, bể không chạy tuần hoàn, thay nước 20 %/ngày Sau 5 ngày tiến hành cho chạy tuần hoàn, thời gian chạy tuần. .. chỉ tiêu trong các nghiệm thức Chương 4: KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 4.5 Đánh giá biến động môi trường ở đầu vào và đầu ra của hệ thống lọc tuần hoàn trong ương ấu trùng tôm càng xanh toàn đực 4.5.1 Độ pH nước đầu vào và đầu ra hệ lọc So sánh chỉ số pH nước đầu vào và nước đầu ra của hệ lọc là khác biệt có ý nghĩa thống kê (p = 0,0 32 < 0,05) Độ pH trung bình giữa nước đầu vào và nước đầu ra của hệ lọc lần... của hệ lọc chưa xử lý hết lượng NH3-N để tạo một môi trường sống tốt cho ấu trùng 4.5.3 Biến động NO2-N 2. 5 mg/lít 2 NO2-N 1.93 1.5 1 0.5 0.044 0. 32 0 Nước đầu vào hệ lọc Nước đầu ra hệ lọc Nước bể ương Biểu đồ 2 So sánh chỉ tiêu NO 2- N của nước đầu vào và đầu ra hệ lọc với NO 2- N trong bể ương Chất lượng nước đầu ra hệ lọc có lượng NO2-N khá thấp (0,044 mg/lít) trong khi đó lượng NO2-N này trong nước... cạnh làm giảm tác hại của NO2-N thì hệ lọc đã có hiệu quả Nếu so sánh lượng nước vào và ra hệ lọc thì sau khi qua hệ lọc NO2-N đã giảm được 1,93/0,044 = 43,8 lần (phụ lục 4), tuy nhiên sự góp phần của hệ lọc chưa tạo điều kiện tốt cho ấu trùng tôm càng xanh thể hiện qua việc chưa loại bỏ hết hàm lượng NO2-N trong bể ương 4.5.4 Biến động Vibrio Vibrio 25 000 22 8 12 Cfu/ml 20 000 15000 10000 3314 5000... lọc, chúng tôi có một số ghi nhận sau đây: - Độ pH nước đầu ra hệ lọc phù hợp dùng để ương ấu trùng tôm càng xanh - Lượng NH3-N, NO2-N nước đầu ra hệ lọc thấp hơn nước đầu vào hệ lọc (2 lần) và (43,8 lần) cho thấy hệ lọc có khả năng xử lý được NH3-N và NO2-N  từ đó cho thấy hệ vi sinh vật trong hệ lọc và Ozone đã phát huy tác dụng tuy nhiên việc xử lý NH3-N và NO2-N chưa mang lại một môi trường sống... trí đo nhiệt đ : trong bể ương  Thời gian đo: 8 giờ sáng và 2 giờ chiều  Số lần đo: mỗi ngày 2 lần  Dụng cụ đo: dùng rượu kế treo ngâm vào trong bể nuôi b pH  Vị trí lấy mẫu: nước trong bể ương, nước đầu vào và đầu ra hệ lọc  Thời gian lấy mẫu: 8 giờ sáng và 2 giờ chiều  Số lần lấy mẫu: mỗi ngày 2 lần  Dụng cụ phân tích: máy đo pH Scanner c Ammonia (NH 3-N)  Vị trí lấy mẫu: nước trong bể ương,... của Bộ Thuỷ Sản đối với nước ương giống tôm càng xanh thì mật độ Vibrio tổng số trong bể ương phải thấp hơn 1000 cfu/ml Nước đầu ra hệ lọc (là nước đầu vào bể ương) đã cao hơn tiêu chuẩn này 3,3 lần (3314/1000) Kết quả nghiên cứu của Hoa và ctv (20 02) cho thấy ở mật độ Vibrio từ 105 – 10 7 cfu/ml ấu trùng tôm càng xanh chết 18 – 80% sau 48 giờ Mức Vibrio trung bình trong bể ương (22 8 12  2, 3x104 cfu/ml)... ra hệ lọc  Thời gian lấy mẫu: 2 giờ chiều  Số lần lấy mẫu: 3 lần /tuần  Dụng cụ phân tích: bộ test Zera cho kiểm tra NH4-/NH3 với bảng so màu d Nitrite (NO2-N)  Vị trí lấy mẫu: nước trong bể ương, nước đầu vào và đầu ra hệ lọc  Thời gian lấy mẫu: 2 giờ chiều  Số lần lấy mẫu: 3 lần /tuần  Dụng cụ phân tích: bộ test Zera cho kiểm tra NO3-/NO2 với bảng so màu e Vibrio tổng số  Vị trí lấy mẫu: nước... thí nghiệm được thực hiện trên hệ tuần hoàn với 20 bể ương trong hệ thống Chúng tôi thực hiện thí nghiệm để đánh giá hiệu quả của hệ lọc 3.8.1 Bố trí thí nghiệm Thí nghiệm có 3 nghiệm thức, mỗi nghiệm thức có 5 bể ương  Nghiệm thức 1: mật độ dưới 50 ấu trùng/lít  Nghiệm thức 2: mật độ 50 – 100 ấu trùng/lít  Nghiệm thức 3: mật độ trên 100 ấu trùng/lít Thông qua kết quả có được của thí nghiệm trên . dẫn nước đã qua hệ lọc vào bể ương Hình 3. 2: Sơ đồ bố trí hệ lọc tuần hoàn và hệ thống bể ương 3.8 .2. 2. Cách vận hành hệ thống tuần hoàn Nước được tuần hoàn từ bể ương qua hệ lọc làm sạch rồi. trùng Đánh giá biến động môi trường bể ương Hiệu quả của hệ thống sản xuất giống bằng phương pháp lọc tuần hoàn Kết luận và đề xuất 3.8 .2. Sơ đồ bố trí và vận hành hệ thống 3.8 .2. 1. Bố. trí hệ thống lọc tuần hoàn - Hệ thống lọc tuần hoàn gồm 20 bể 100 lít được bố trí như hình vẽ. - Nước tuần hoàn ra từ các bể ương được chuyển vào một bể chứa 2 m 3 (NV) và bơm vào trong hệ lọc