Đang tải... (xem toàn văn)
Dành cho sinh viên Y, những kinh nghiệm, kiến thức về ký sinh trùng được mô tả khá kỹ về hệ thống ký sinh trùng. một cẩm nang cầm tay đáng để tham khảo.
Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP 1 TÀI LIỆU HỌC TẬP THỰC HÀNH I. HÀNH CHÍNH: 1. Tên môn học: Ký sinh trùng (KST) 2. Tên bài: Xét nghiệm phân tìm ký sinh trùng đường ruột và xét nghiệm tìm trứng giun kim (Enterobius vermicularis) 3. Đối tượng: Sinh viên Y3 4. Thời gian: 4 tiết 5. Địa điểm giảng: phòng thực tập 6. Tên người biên soạn: II. Mục tiêu học tập: 2.1. Mô tả và tiến hành quy trình xét nghiệm phân trực tiếp và tập trung cơ bản. 2.2. Mô tả và tiến hành quy trình xét nghiệm tìm trứng giun kim. III. N ỘI DUNG: 3.1. KỸ THUẬT XÉT NGHIỆM PHÂN 3.1.1. LẤY BỆNH PHẨM Tiêu chảy: lấy phân và xem ngay. Táo bón: phải cho bệnh nhân dùng thuốc nhuận trường. Lấy chỗ phân nhão; nếu phân sệt hay lỏng chú ý lấy chỗ có nhầy và máu. Số lượng phân : bằng đầu ngón tay. Cho vào lọ sạch và kín. 3.1.2. XỬ LÝ BỆNH PHẨM 3.1.2.1. Quan sát bằng mắt thường Trạng thái: rắn, mềm, nhão hay lỏng. Màu sắc: + Phân đen do xuất huyết trên như trong trường hợp nhiễm giun móc. + Phân đỏ do xuất huyết tiêu hóa dưới như trong lỵ amip. 3.1.2.2. Soi phân trên kính hiển vi Nên soi tươi trong vòng 2 giờ vì sau 2 giờ thể hoạt động của amip sẽ bị chết, rất khó phát hiện. Nếu không có điều kiện soi ngay, cần cố định phân trong dung dịch F 2 AM. Pha chế dung dịch F 2 AM (Phenol, Formol, Alcool, Blue methylene). + Dung dịch mẹ: Bleu methylene 2g Alcool 95 0 40ml Phenol 8ml Formol 10ml Nước cất 40ml + Dung dịch sử dụng: Dung dịch mẹ 1ml Acid phenique 0,1ml Formol 10ml Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP 2 Nước cất 89ml Trong trường hợp trứng giun sán quá ít chúng ta có thể tập trung KST trong dung dịch F 2 AM. 3.1.3. SOI TƯƠI 3.1.3.1. Soi tươi với nước muối sinh lý (NaCl 0,85%) Chủ yếu dùng để quan sát chuyển động của thể tư dưỡng các loại đơn bào như trùng roi (Pentatrichomonas intestinalis, Embadomnas intestinalis, Retortamonas intestinalis, .v.v.), amip (Entamoeba histolytica, Entamoeba coli, Iodamoeba buetschlii, ), trùng lông (Balantidium coli), ấu trùng giun lươn hoặc phôi có lông tơ (miracidium) trong trứng sán máng. 3.1.3.2. Nhuộm sống. Chủ yếu dùng cho các đơn bào, thuốc nhuộm thấm từ từ và làm lộ dần nhân, nguyên sinh chất trong lúc chúng vẫn sống, từ đó có thể định tên chính xác hơn. Phương pháp thường dùng là nhuộm Bailenger - Vật liệu: + Thuốc nhuộm : · Crystal violet 2g · Fuchsine basique 0,05g · Alcool 95 0 20ml · Phenol cristallise 10 ml + Pha các chất liệu trên, để một đêm, sau đó thêm 100 ml nước cất. Giữ trong bình kín, màu nâu. - Kỹ thuật nhuộm : + Nhỏ một giọt dịch treo KST lên lam + Đặt một giọt nhỏ thuốc nhuộm bên cạnh bằng pipet Pasteur đầu nhọn + Dùng góc lamen trộn đều hai giọt + Đậy lamen + Quan sát dưới kính hiển vi, thường là với ống kính x 45, dùng ống kính dầu khi thấy cần. - Kết quả : xem sau 30, 45, 60 phút, vài giờ sau khi nhuộm (lúc ngưng quan sát phải để vào buồng ẩm trong tủ ấm 37 0 C). Nguyên sinh chất của thể hoạt động và bào nang bắt màu đỏ, những cấu trúc của nhân bắt màu đen. 3.1.3.3. Nhuộm lugol Đây là kỹ thuật nhuộm phân thường quy tại các phòng thí nghiệm Ký Sinh Trùng. - Vật liệu: + Thuốc nhuộm : dung dịch lugol: · Potassium iodide 10g · Iodine crystals 5g · Nước cất 100ml + Thuốc được đựng trong bình kín, màu nâu. - Kỹ thuật nhuộm : nhỏ một giọt dung dịch lugol lên lam dùng que tre lấy một lượng nhỏ phân, đánh cho tan đậy lamen quan sát dưới kính hiển vi Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP 3 - Kết quả: Tốt, nhuộm vàng bào nang các đơn bào trứng và ấu trùng giun sán. Các không bào của đơn bào có glycogen sẽ bắt màu nâu sẫm. Tuy nhiên phương pháp này không tốt cho thể hoạt động của các đơn bào. 3.1.3.4. Thường trên một lam, người ta làm phết phân với nước muối sinh lý bên phải và phết với lugol bên trái. Tiêu chuẩn một phết phân lý tưởng Đặt lên tờ báo vẫn đọc được chữ Nếu dầy quá phân sẽ che lấp KST khó xem. Nếu mỏng quá, mật độ ký sinh trùng sẽ thưa, khó phát hiện. 3.1.3.5. Kỹ thuật đọc mẫu phân trên kính hiển vi Trước tiên xem trên vật kính (X10) nếu phát hiện vật thể nghi ngờ KST chúng ta chuyển qua vật kính (X40) để xem chi tiết. Tìm KST theo hình chữ Z cho đến hết lamen. Kết quả: Loài KST: ( giun sán, amip, ) Dạng KST: ( trứng giun sán, bào nang, thể hoạt động, ) Ước lượng mật độ KST: đơn bào và trứng giun sán 12 KST/lam + 36 KST/lam ++ 712 KST/lam +++ > 12 KST/lam ++++ 3.1.4. PHƯƠNG PHÁP KATO Với phương pháp Kato, ta có thể quan sát mỗi lần 50 – 60 mg phân trong khi các phương pháp thông thường khác chỉ quan sát được 2mg. - Vật liệu : Lamen celophane, cắt thành miếng 22mm 30mm. Dung dịch glycerin - xanh malachite: gồm glycerin nguyên chất 100ml, nước cất 100ml và dung dịch xanh malachite 3% trong nước 1ml. Ngâm các lamen celophane vào dung dịch ít nhất 1 ngày. Que tre. Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP 4 Lưới kim loại không rỉ cắt thành miếng vuông 4 cm 4 cm, mắt lưới bé để ép phân qua, loại bỏ những sợi rau hoặc hạt thực vật khi thấy cần. - Kỹ thuật Bảng kiểm phương pháp Kato TT Quy trình Có không 1 Đặt phân lên lam 2 Đậy lamen celophane 3 Ép dẹp khối phân 4 Để yên 5 Quan sát tiêu bản Ghi chú: 1. Dùng que tre lấy 50 mg phân đặt trên mặt một miếng lam. 2. Đậy lamen celophane. 3. Lật úp tấm lam và ép lên một mặt phẳng có lót giấy thấm cho đến khi khối phân lan ra theo một hình gần tròn đường kính 20 – 25 mm. 4. Để 1 giờ ở nhiệt độ phòng hoặc 20 –30 phút ở 40 0 C. 5. Quan sát dưới ống kính 10. - Kết quả: phương pháp Kato cho phép phát hiện trứng giun đường ruột và trứng Schistosoma mansoni tốt như các phương pháp tập trung. Tuy nhiên phương pháp này không thể dùng để tìm đơn bào và ấu trùng giun. Nếu để lâu hơn, glycerin thấm xuống phân nhiều quá có thể làm trong trứng giun móc, trứng Schistosoma spp, làm khó đọc. Nếu chưa xem ngay, lật úp tấm lam. 3.1. 5. PHƯƠNG PHÁP WILLIS: TẬP TRUNG KST BẰNG NƯỚC MUỐI BÃO HOÀ - Vật liệu: Nước muối bão hoà: NaCl tinh chế 250g Nước cất 750 ml - Kỹ thuật Bảng kiểm phương pháp Willis TT Quy trình Có không 1 Khuấy tan phân trong ống nghiệm 2 Thêm nước muối bão hoà 3 Đặt lam (lamen) 4 Để yên 5 Làm tiêu bản lugol Ghi chú : 1. Khuấy 1g phân tan trong 3 – 4 ml nước muối bão hoà trong một ống nghiệm. 2. Vừa thêm nước muối bão hoà vừa khuấy cho đến khi mặt thoáng dâng lên gần miệng ống, ngưng khuấy và nhỏ từng giọt cho đến khi mặt thoáng lồi lên miệng ống. Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP 5 3. Đặt 1 miếng lam (hoặc lamen) lên miệng ống, cho tiếp xúc với mặt thoáng nước muối, lưu ý không có bọt khí. 4. Để yên 15 – 60 phút. 5. Nhấc lam (hoặc lamen) lên, nhỏ thêm 1 giọt lugol, đậy lamen (hoặc úp lamen lên một lam có 1 giọt lugol), quan sát dưới kính hiển vi. - Kết quả: Bào nang các đơn bào và trứng giun sán, đặc biệt là trứng giun móc và Hymenolepis nana sẽ nổi lên mặt thoáng. 3.2. Tìm trứng Enterobius vermicularis - Giun kim không đẻ trứng trong ruột nên không thể tìm thấy trứng trong phân (trừ trường hợp giun cái và tan rã xác trong ruột). Phương pháp chính xác nhất dành cho giun kim chính là băng keo dán vào hậu môn (Graham). - Giun trưởng thành có thể được bệnh nhân hoặc cha mẹ bệnh nhân bắt ở quanh rìa hậu môn. Muốn quan sát, ta có thể đặt giun lên lam, nhỏ 1 giọt lactophenol, đậy lamen, chờ 10 – 15 phút đợi giun trong ra và có thể quan sát rất rõ các đặc điểm, hình thái của giun. - Muốn tìm trứng giun kim ở móng tay,chúng ta cắt rìa móng, ngâm vào dung dịch NaOH 0,1 M trong một chai thủy tinh, lắc mỗi giờ, sau đó lấy phần dung dịch ly tâm và quan sát phần cặn dưới kính hiển vi. TÀI LIỆU THAM KHẢO 1. Bộ môn Ký sinh trùng (1992), Thực tập Ký sinh trùng, Khoa y dược trường Đại học Tây Nguyên. 2. Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng, Trường Đại Học Y Khoa Thái Nguyên. 3. Bộ Môn Ký sinh trùng (1998), Ký sinh trùng y học , Trường Đại Học Y Hà Nội. Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng - Đại Học Y Hà Nội. 4. Gillespie, S.H., Hawkey, P.M. (1995), Medical Parasitology, A Practical Approach, IRLPress, OxfordUniversity Press. 5. Jitra Waikagul, et al (1997), Soil – Transmitted Helminths. 6. Trần Xuân Mai và Cs (2002), Ký Sinh Trùng Y Học, Bộ Môn Ký Sinh Học Khoa Y, Đại Học Y Dược Tp. Hồ chí Minh, Nhà Xuất Bản Đà Nẵng. 7. Pawlowski Z. S., Schad G. A. and Stott G. J. (1991), Hookworm infection and Anaemia, Approaches to Prevention and Control, WHO, Geneva. 8. WHO (1998), Direct faecal smear, Saline and Iodine wet mount preparation . 9. WHO (1991), Basic Laboratory Methods in Medical Parasitology, Geneva, pp. 10 - 109. iiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiii iiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiii iiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiiii Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP 6 TÀI LIỆU HỌC TẬP THỰC HÀNH I . HÀNH CHÍNH: 1. Tên môn học: Ký sinh trùng 2. Tên bài: Hình thể giun sán 3. Đối tượng: Sinh viên Y3 4. Thời gian: 8 tiết 5. Địa điểm giảng: phòng thực tập 6. Tên người biên soạn: II. MỤC TIÊU HỌC TẬP: 2.1. Quan sát, mô tả và nhận dạng được hình thể trứng giun sán thường gặp trên tiêu bản. 2.2. Quan sát, mô tả và nhận dạng được hình thể ấu trùng và giun sán trưởng thành thường gặp trên tiêu bản. III. NỘI DUNG: ĐỊNH LOẠI GIUN SÁN Y HỌC Bảng 1: Định loại trứng giun 1. Hình bầu dục, màu nâu đen, vỏ dầy, sần sùi (50 mcm - 25 mcm) (40 –50 mcm) Ascaris lumbricoides Hình bầu dục, màu nâu cam vỏ dầy, có hai nút nhầy ở cực 50 mcm 20 mcm Trichuris trichiura 2. vỏ mỏng 3 Vỏ dầy 5 3. Trứng không đối xứng, có 16 phôi bào, 80 mcm 5 mcm Ternidens deminutus Trứng đối xứng 4 4. Có 2 – 8 phôi bào 60 mcm 40 mcm Ancylostoma duodenale 70 mcm 40 mcm Necator americanus Có 16 phôi bào hay hơn 80 mcm 50 mcm Trichostrongylus sp. 5. Không đối xứng, có phôi, 50 mcm 20 mcm Enterobius vermicularis (*) Đối xứng có một khối tế bào màu nâu, (50 -75 mcm) (40 - 50 mcm) Ascaris lumbricoides ( ) (*) Hiếm khi thấy trong phân ( ) Trứng thụ tinh, mất lớp albumin. Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP 7 Bảng 2: Định giống ấu trùng rhabditoid 1. Ancylostoma, Necator: thực quản không phình ở phần giữa, xoang miệng dài và hẹp, đuôi nhọn và đều. 2. Strongyloides: thực quản không phình ở phần giữa, xoang miệng ngắn, đuôi nhọn. 3. Trichostrongylus: thực quản không phình ở phần giữa, xoang miệng dài và hẹp, đuôi nhọn, có mang một bướu nhỏ. 4. Rhabditis: thực quản có phình ra ở phần giữa, xoang miệng dài và hẹp, đuôi nhọn. Bảng 3: Định giống ấu trùng filariform 1. Ancylostoma: thường có bao, đầu bằng, gai miệng không rõ, đuôi dài đều. 2. Necator: thường có bao, đầu tròn, gai miệng rất rõ, đuôi ngắn và nhọn. 3. Strongyloides: không có bao, thực quản dài đến ½ thân, đuôi chẻ làm hai. 4. Trichostrongylus: không có bao, ruột uốn khúc, đuôi nhọn, mang một bướu nhỏ. Bảng 4: Định loại trứng sán dải 1. Có nắp, 7545 mcm Diphyllobothrium latum Không có nắp 2 2. Một vỏ dầy, màu nâu, có sọc theo bề dày vỏ 3 Hai lớp vỏ 4 3. Trứng rời rạc, 40 mcm Toenia saginata, Toenia solium 4 –10 trứng trong một bọc Dipylidium caninum 4. 48 – 60 mcm, có sợi ở hai cực Hymenolepis nana 60 –80 mcm, không có sợi ở hai cực Hymenolepis diminuta Bảng 5: Định loại trứng sán lá Trứng có gai: 1.Gai to ở đầu cực 150 mcm 50 mcm Schistosoma haematobium (*) Gai ở bên cạnh cực 2 Gai lớn và nhọn 4 2. Gai lớn và nhọn 150 mcm 50 mcm Schistosoma mansoni Gai nhỏ và cong 90 mcm 60 mcm S. japonicum S. mekongi Trứng có nắp: 1. Nhỏ 25 mcm – 30 mcm 2 Trung bình 40 mcm 25 mcm Dicrocoelium dendriticum Lớn 75 – 150 mcm 4 2. Phôi đối xứng, 25 mcm 15 mcm Heterophyes Phôi không đối xứng 3 3. Hẹp, 30 mcm 10 mcm Opisthorchis felineus Rộng hơn 30 mcm 15 mcm Clonorchis sinensis 4. Nắp dẹp, vai rõ, 100 mcm 50 mcm Paragonimus westemani Nắp lồi, vai không rõ 5 5. 140 mcm 70 mcm Fasciola hepatica hay Fasciolopsis buski 100 mcm 60 mcm Echinostoma ilocanum (*) thấy khi phân có lẫn nuớc tiểu Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP 8 Bảng 6: Đối chiếu kích thước trứng giun sán HÌNH THỂ MỘT SỐ GIUN SÁN Y HỌC I. HÌNH THỂ GIUN 1.1. GIUN TÓC (Trichuris trichiura) 1.1.1.Giun trưởng thành: phần đầu mảnh như sợi tóc, phần đuôi phình to chứa ruột và cơ quan sinh dục Con đực dài 3 - 4,5 cm, đuôi cong có gai giao hợp, con cái đuôi thẳng đầu tròn. 1.1.2. Trứng: 50 x 22 mcm, giống mo cau, có hai nút nhầy hai đầu, không có phôi lúc mới sinh. Trichuris trichiura đực Trichuris trichiura cái Trứng 1.2. GIUN ĐŨA (Ascaris lumbricoides) 1. 2.1. Giun trưởng thành: màu trắng sữa hay màu hồng. - Con đực dài khoảng 20 cm , đuôi cong có hai gai giao hợp. - Con cái dài khoảng 25 cm, đuôi thẳng, lỗ sinh dục ở 1/3 thân trước. Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP 9 1.2.2. Trứng: Có 3 dạng. - Trứng điển hình, thụ tinh, có vỏ albumin, khoảng 70 mcm , màu nâu do sắc tố mật. - Trứng không điển hình do mất lớp vỏ albumine. - Trứng lép: vỏ sần sùi do không thụ tinh, hình dài 90 x 40 mcm, bên trong có nhiều hạt. Giun đũa đực (nhỏ, đuôi cong), cái (lớn, đuôi thẳng) trứng thụ tinh trứng không thụ tinh (lép) 1.3. GIUN MÓC Giun móc có 2 loài: - Ancylostoma duodenale. - Necator americanus. 1.3.1.Giun trưởng thành: 1.3.1.1. Ancylostoma duodenale: miệng có 2 đôi móc. - Con đực: dài khoảng 8 mm , đuôi xòe ,có sườn bên và sườn lưng chẻ đôi rồi chẻ 3. - Con cái đuôi thẳng dài khoảng 15 mm. Lỗ sinh dục gần cuối thân. 1.3.1.2. Necator americanus: miệng có hai dao hình bán nguyệt. - Con đực : đuôi xòe dài khoảng 8mm có sườn bên và sườn lưng chẻ 2 rồi chẻ 2. - Con cái :đuôi thẳng, dài khoảng 15mm lỗ sinh dục cũng nằm cuối thân. 1.3.2. Trứng: khó phân biệt giữa hai loài, có hình trái xoan vỏ mỏng, có 4 - 8 phôi bào. Kích thước 60-70 mcm. Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP 10 Xoang miệng Ancylostoma duodenale Xoang miệng Necator americanus trứng 1.3.3. Ấu trùng : (chung cho cả hai loài) Ấu trùng rhabditoid Ấu trùng filariform - Miệng hở - Miệng kín - Thực quản có ụ phình - Thực quản hình trụ, chiều - Đuôi nhọn ngang bằng 1/2 thân - Đuôi nhọn 1.4. GIUN LƯƠN (Strongyloides stercoralis) 1.4.1. Giun trưởng thành. 1.4.1.1. Giun cái sống ký sinh Có hình ống mảnh mai, dài 1,5- 10 mm, rộng 27- 95 mcm. Thực quản hình ống. Ruột gồm 40 tế bào xếp thành hai cột lưng và bụng. Trực tràng ngắnm, hệ bài tiết mở ra ở bụng ngay sau dây thần kinh. Hệ sinh dục gồm tử cung, buồng trứng, âm hộ nằm 2/3 trước thân. Trứng xếp thành hàng trong tử cung. 1.4.1.2. Giun cái sống tự do: Hình con suốt dài 1,5mm, rộng 85mcm. thành cơ thể mỏng có cơ vân mỏng. Ruột gồm 22 tế bào xếp thành hai hàng lưng và bụng. Trực tràng ngắn. Hệ sinh dục gồm có tử cung, buồng trứng và âm hộ nằm giữa thân. 1.4.1.3. Giun đực sống tự do: Hơi nhỏ hơn con cái dài 1.2mm, rộng 55 mcm. Đuôi ngắn và rộng hơn con cái. Bộ phận sinh dục gồm dịch hoàn và túi chứa tinh. 1.4.2. Trứng: Trứng giun lươn rất giống trứng giun móc, có hình ellip, hơi dẹp hai đầu vỏ rất mỏng, phôi bào có từ 8- 18 tế bào. 1.4.3. Ấu trùng: 1.4.3.1. Ấu trùng rhabditoid Dài 400 mcm, rộng 20 mcm, thực quản dài 1/3 thân và có ụ phình, đuôi nhọn. [...]... nang trong nước muối sinh lý Balantidium coli, bào nang nhuộm lugol TÀI LIỆU THAM KHẢO 1 Bộ môn Ký sinh trùng (1992), Thực tập Ký sinh trùng, Khoa y dược trường Đại học Tây Nguyên 2 Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng, Trường Đại Học Y Khoa Thái Nguyên 3 Bộ Môn Ký sinh trùng (1998), Ký sinh trùng y học , Trường Đại Học Y Hà Nội Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng - Đại Học... Quan sát dưới kính hiển vi TÀI LIỆU THAM KHẢO 1 Bộ môn Ký sinh trùng (1992), Thực tập Ký sinh trùng, Khoa y dược trường Đại học Tây Nguyên 2 Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng, Trường Đại Học Y Khoa Thái Nguyên 3 Bộ Môn Ký sinh trùng (1998), Ký sinh trùng y học , Trường Đại Học Y Hà Nội Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng - Đại Học Y Hà Nội 4 Gillespie, S.H., Hawkey,... trên 10 KSTSR / 1 vi trường TÀI LIỆU THAM KHẢO 1 Bộ môn Ký sinh trùng (1992), Thực tập Ký sinh trùng, Khoa y dược trường Đại học Tây Nguyên 2 Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng, Trường Đại Học Y Khoa Thái Nguyên 3 Bộ Môn Ký sinh trùng (1998), Ký sinh trùng y học , Trường Đại Học Y Hà Nội Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng - Đại Học Y Hà Nội 4 Gillespie, S.H., Hawkey,... hoạt động Là loại đơn bào to nhất ký sinh ở người có hình quả trứng, dài 30 - 200 mcm (trung bình 60mcm), rộng 25- 120 mcm (trung bình 45 mcm) Thân phủ đầy lông tơ, có một miệng bào và hậu môn Nguyên sinh chất chứa nhiều không bào Có hai nhân: nhân to hình hạt đậu là nhân dinh dưỡng, nhân nhỏ hình tròn là nhân sinh sản Balantidium coli, thể hoạt động trong nước muối sinh lý Balantidium coli,thể hoạt động... Entamoeba histolytica, bào nang 2 nhân trong nước muối sinh lý Entamoeba histolytica, bào nang 4 nhân nhuộm Trichrom 2 ENTAMOEBA COLI Là loại đơn bào không gây bệnh Sống ở đại tràng bằng lối sống hoại sinh 2.1 Thể hoạt động Thể này lớn hơn E histolytica ,15 - 30 mcm, chuyển động chậm, ranh giới giữa nội và ngoại nguyên sinh chất thường không rõ rệt, nội nguyên sinh chất lấm tấm hạt hơi thô, có không bào chứa... CHÍNH: 1 Tên môn học: Ký sinh trùng 2 Tên bài: Hình thể ký sinh trùng sốt rét 3 Đối tượng: Sinh viên Y3 4 Thời gian: 8 tiết 5 Địa điểm giảng: phòng thực tập 6 Tên người biên soạn II MỤC TIÊU HỌC TẬP: 2.1 Quan sát, mô tả và nhận dạng được các thể tư dưỡng, phân liệt và giao bào 2.2 Nhận dạng được 3 thể của Plasmodium vivax, Plasmodium falciparum III NỘI DUNG: 3.1 HÌNH THỂ KÝ SINH TRÙNG SỐT RÉT TRÊN PHẾT... HÀNH I HÀNH CHÍNH: 1 Tên môn học: Ký sinh trùng 2 Tên bài: Hình thể đơn bào 3 Đối tượng: Sinh viên Y3 4 Thời gian: 4 tiết 5 Địa điểm giảng: phòng thực tập 6 Tên người biên soạn: II MỤC TIÊU HỌC TẬP Quan sát, mô tả và nhận dạng được hình thể các đơn bào thường gặp trên tiêu bản III NỘI DUNG: 3.1 ĐỊNH LOẠI THỂ HOẠT ĐỘNG CỦA ĐƠN BÀO (quan sát trực tiếp với nước muối sinh lý) 3.1.1 Màng tế bào không đều... 6 Trần Xuân Mai và Cs (2002), Ký Sinh Trùng Y Học, Bộ Môn Ký Sinh Học Khoa Y, Đại Học Y Dược Tp Hồ chí Minh, Nhà Xuất Bản Đà Nẵng 7 WHO (1998), Direct faecal smear, Saline and Iodine wet mount preparation 8 WHO (1991), Basic Laboratory Methods in Medical Parasitology, Geneva 24 Nguyễn Quốc Phương K29G DHYHP TÀI LIỆU HỌC TẬP THỰC HÀNH I HÀNH CHÍNH: 1 Tên môn học: Ký sinh trùng 2 Tên bài: Xét nghiệm... bào có màu xanh nhạt Bạch cầu ưa axit có những hạt màu đỏ Bạch cầu đa nhân trung tính có những hạt to nhỏ màu xanh và đỏ Tiểu cầu tụ thành từng đám 25, màu đỏ tươi hoặc tím nhạt KSTSR: nhân màu đỏ tía, nguyên sinh chất màu xanh da trời hay xanh tím, hạt sắc tố bắt màu tím sẫm hoặc màu nâu đen 3.3 ĐỌC TIÊU BẢN ĐỂ TÌM KÝ SINH TRÙNG SỐT RÉT 3.3.1 Kỹ thuật đọc tiêu bản : - Phải dùng vật kính dầu (x... đọc phết máu mỏng, hình dạng KSTSR rất rõ ràng, định loài dễ dàng và chính xác hơn 3.3.2 Đánh giá mật độ Ký Sinh Trùng Sốt Rét - Ký Sinh Trùng Sốt Rét tính trong 1 microlit (mm3) Công thức tính như sau: Số lượng KSTSR x 8000 = Số KSTSR / mm3 máu Số lượng bạch cầu (8000 : là số lượng bạch cầu trung bình ở người bình thường /mm3 máu) Vậy chúng ta phải đếm song song vừa bạch cầu vừa KSTSR và phải đếm . sinh trùng (1992), Thực tập Ký sinh trùng, Khoa y dược trường Đại học Tây Nguyên. 2. Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng, Trường Đại Học Y Khoa Thái Nguyên. 3. Bộ Môn Ký sinh. sinh trùng (1992), Thực tập Ký sinh trùng, Khoa y dược trường Đại học Tây Nguyên. 2. Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng, Trường Đại Học Y Khoa Thái Nguyên. 3. Bộ Môn Ký sinh. Khoa Thái Nguyên. 3. Bộ Môn Ký sinh trùng (1998), Ký sinh trùng y học , Trường Đại Học Y Hà Nội. Bộ môn Ký sinh trùng (1998), Thực tập Ký sinh trùng - Đại Học Y Hà Nội. 4. Gillespie, S.H., Hawkey,