Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

120 1.1K 17
Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

Thông tin tài liệu

Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

BỘ GIÁO DỤC ĐÀO TẠO TRƢỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH BỘ MÔN CÔNG NGHỆ SINH HỌC ************************ KHÓA LUẬN TỐT NGHIỆP XÂY DỰNG QUY TRÌNH KỸ THUẬT TÁCH CHIẾT, KHẢO SÁT TÍNH KHÁNG KHUẨN KHẢ NĂNG CHỐNG OXY HÓA CỦA MỘT SỐ HỢP CHẤT THỨ CẤP TỪ LÁ CÂY XUÂN HOA (Pseudranthemum palatiferum). Ngành học: CÔNG NGHỆ SINH HỌC Niên khóa: 2003 – 2007 Sinh viên thực hiện: ĐỖ THỊ TÚY PHƢỢNG Thành phố Hồ Chí Minh Tháng 9/2007 BỘ GIÁO DỤC ĐÀO TẠO TRƢỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH BỘ MÔN CÔNG NGHỆ SINH HỌC ************************** XÂY DỰNG QUY TRÌNH KỸ THUẬT TÁCH CHIẾT, KHẢO SÁT TÍNH KHÁNG KHUẨN KHẢ NĂNG KHÁNG OXY HÓA CỦA MỘT SỐ HỢP CHẤT THỨ CẤP TỪ LÁ CÂY XUÂN HOA (Pseudranthemum palatiferum). Giáo viên hƣớng dẫn: Sinh viên thực hiện: TS. PHAN PHƢỚC HIỀN ĐỖ THỊ TÚY PHƢỢNG Thành phố Hồ Chí Minh Tháng 9/2007 iii 1 LỜI CẢM TẠ Con xin khắc ghi công ơn ba mẹ những ngƣời thân đã nuôi dƣỡng giáo dục con nên ngƣời. Tôi xin gửi lòng biết ơn đến: - Ban Giám Hiệu Trƣờng Đại Học Nông Lâm Tp. Hồ Chí Minh. - Ban Giám Đốc Trung Tâm Phân Tích Thí Nghiệm Hóa Sinh, Trƣờng Đại Học Nông Lâm Tp. Hồ Chí Minh. - Thầy chủ nhiệm, thầy cô bộ môn Công Nghệ Sinh Học. Đã hỗ trợ tạo điều kiện thuận lợi cho tôi trong suốt quá trình học tập hoàn thành đề tài. Tôi xin chân thành biết ơn: - TS. Phan Phƣớc Hiền. - KỹTrịnh Phi Ly. Đã tận tình hƣớng dẫn, giúp đỡ, giành nhiều thời gian công sức để truyền đạt những kiến thức, kinh nghiệm quý giá, tạo mọi điều kiện tốt cho tôi hoàn thành khóa luận này. Tôi xin gửi lời cảm ơn đến: - ThS. Huỳnh Kim Diệu đã tận tình giúp đỡ trong việc lấy mẫu lá Xuân Hoa đóng góp những ý kiến quý báu cho luận văn. - TS. Nguyễn Ngọc Hải, Phòng Vi Sinh Khoa Chăn Nuôi Thú Y, Trƣờng Đại Học Nông Lâm. - Cô Chú Đinh Công Bảy, chủ cơ sở trà Hoàn Ngọc 7 Nga Tây Ninh đã tận tình giúp đỡ cung cấp số lƣợng lớn lá Xuân Hoa. Chân thành cảm ơn các bạn lớp Công Nghệ Sinh Học 29 đã động viên, giúp đỡ tôi trong suốt thời gian làm đề tài. iv TÓM TẮT Đỗ Thị Tuý Phƣợng, Đại Học Nông Lâm Tp. Hồ Chí Minh. Tháng 3/2007. “ Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết, khảo sát tính kháng khuẩn khả năng chống oxy hóa của một số hợp chất thứ cấp từ lá Xuân Hoa (Pseudranthemum palatiferum). Giáo viên hƣớng dẫn: TS. Phan Phƣớc Hiền Đề tài đƣợc tiến hành tại: - Phòng thí nghiệm hóa lý, Trung Tâm Phân Tích Thí Nghiệm Hóa Sinh, Trƣờng Đại Học Nông Lâm Tp. Hồ Chí Minh. - Phòng Vi Sinh, Khoa Chăn Nuôi Thú Y, Trƣờng Đại Học Nông Lâm Tp. Hồ Chí Minh. Thời gian tiến hành: từ 15/3/2007 đến 30/7/2007. Nội dung tiến hành: - Tiến hành chiết tách các phân đoạn từ cao kháng khuẩn nhất bằng sắc cột sắc lớp mỏng, sau đó thử nghiệm khả năng kháng khuẩn của các phân đoạn này với vi khuẩn E.coli, Staphyloccoccus aureus, Pseudomonas aeruginosa. - Tiến hành sắc cột, sắc lớp mỏng sắc điều chế để tách chiết một số hợp chất thứ cấp từ phân đoạn có hoạt tính kháng khuẩn mạnh nhất. - Gửi mẫu chạy phổ cộng hƣởng từ hạt nhân để xác định cấu trúc của các hợp chất đƣợc tách chiết ở phòng phân tích cấu trúc, Viện Hoá Học,Trung tâm khoa học Tự Nhiên, Công Nghệ Quốc Gia Hà Nội. - Thử nghiệm khả năng chống oxy hóa của lá Xuân hoa bằng quy trình DPPH. Kết quả đạt đƣợc: - Xác định đƣợc cao chloroform có hoạt tính kháng khuẩn mạnh nhất với nồng độ ức chế tối thiểu là : MICE. coli = 500 µg/ml. v MICsalmonella= 500 µg/ml. - Tách chiết đƣợc 18 phân đoạn xác định đƣợc phân đoạn có hoạt tính kháng khuẩn là XH9, XH10, XH11, XH12, XH13. - Tiến hành tách chiết trên phân đoạn có hoạt tính kháng khuẩn này thu đƣợc 2 hợp chất XH-K11 XH-K13. - Sau khi chạy phổ tham khảo một số tài liệu, đã định danh đƣợc XH-K11 là apigenin 7-O-β- glucoside, có công thức phân tử: C21H20O10 chất XH-K13 là β- sitosterol-3-O- β-glucoside, có công thức phân tử: C35H60O5. - Khảo sát tính chống oxy hóa của lá Xuân Hoa cho thấy hàm lƣợng các phân tử ức chế DPPH là khá cao (85,7%), thông qua so sánh chỉ số IC50 của mẫu Xuân Hoa với Vitamin C: IC50 xuân hoa = 66,55 (µg/ml). IC50 vitamin c = 57,05 (µg/ml). vi SUMMARY Do Thi Tuy Phuong, Nong Lam University Ho Chi Minh City. “Establishing the method of isolating, researching antibacterial activity and antioxidant property of secondary metabolite compounds extracted from Xuan Hoa leaves”. Researching Place: Physicochemiscal department, Analysis and Biochemistry Center, Nong Lam University Ho Chi Minh City. Content: - Isolating and purifying a number of fractions of this glue by column chromatography (CC) and thin layer chromatography (TLC), after that researching antibacterial property of these fractions for E. coli, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa. - Using CC and TLC to isolate and purify metabolite compounds of these antibacterial fractions. - Studying antioxidant activity of Xuan Hoa leaves by using DPPH process. Result: - Identifying chloroform glue is the most antibacterial activity, with : MICE. coli = 500 µg/ml. MICsalmonella= 500 µg/ml. - Getting 18 fractions and identifying the most antibacterial active fraction. - Purifying and determining molecular formula of the two compounds: apigenin 7-O-β- glucoside and β- sitosterol-3-O- β-glucoside. - Determination of antioxidant property of Xuan Hoa extract shows that the molecular volume which inhibits oxidant activity is high (85,7% Vitamin C): IC50 xuân hoa = 66,55 (µg/ml). IC50 vitamin c = 57,05 (µg/ml). vii MỤC LỤC NỘI DUNG TRANG Lời cảm ơn iii Tóm Tắt . iv Mục lục vii Danh sách các chữ viết tắt . xi Danh sách các hình biểu đồ xii Danh sách các bảng đồ . xiii 1. MỞ ĐẦU . 1 1.1. Đặt vấn đề . 2 1.2. Mục đích - Yêu cầu 2 1.2.1. Mục đích 2 1.2.2. Yêu cầu 2 2. TỔNG QUAN TÀI LIỆU . 3 2.1. Giới thiệu về cây Xuân Hoa . 3 2.1.1. Đặc điêm thực vật học . 3 2.1.2. Đặc điểm hình thái 3 2.1.3. Phân bố 4 2.1.4. Nhân giống 4 2.2. Công dụng của cây Xuân Hoa 4 2.2.1. Theo kinh nghiệm dân gian . 4 2.2.2. Tác dụng sinh học . 5 2.3.1.1. Bảo vệ tế bào gan . 5 2.3.1.2. Ảnh hƣởng lên bệnh tiêu chảy ở heo . 10 2.3. Thành phần hóa học . 13 2.4. Đại cƣơng về một số hợp chất hữu cơ tự nhiên . 15 viii 2.4.1. Alcaloid . 15 2.4.2. Flavonoid . 16 2.4.3. Tinh dầu 16 2.4.4. Saponin 17 2.5. Đại cƣơng về vi khuẩn đƣờng ruột 17 2.5.1. Định nghĩa . 17 2.5.2. Hình thể . 17 2.5.3. Tính chất nuôi cấy . 18 2.5.4. Đặc tính sinh hóa . 18 2.5.5. Sức đề kháng . 19 2.5.6. Độc tố 19 2.5.7. Cấu trúc kháng nguyên 19 2.5.8. Khả năng gây bệnh 21 2.6. Một số đặc tính của vi khuẩn thử nghiệm 21 2.6.1. Staphyl ococcus aureus . 21 2.6.2. Pseudomonas aeruginosa 21 2.6.3. Escherichia coli . 21 2.6.4. Salmonella . 22 2.7. Hoạt tính chống oxy hóa DPPH . 23 3. VẬT LIỆU PHƢƠNG PHÁP TIẾN HÀNH 24 3.1. Vật liệu . 24 3.2. Địa điểm thời gian thực hiện . 24 3.2.1. Địa điểm 25 3.2.2. Thời gian . 25 3.3. Thiết bị, dụng cụ hóa chất . 25 3.3.1. Thiết bị dụng cụ 25 3.3.2. Hóa chất 27 ix 3.4. Phƣơng pháp tiến hành . 28 3.4.1. Xử lý nguyên liệu 28 3.4.2. Điều chế các loại cao . 28 3.4.2.1. Điều chế cao ete dầu hỏa 28 3.4.2.2. Điều chế cao chloroform 29 3.4.2.3. Điều chế cao n-butanol . 29 3.4.2.4. Điều chế cao nƣớc 29 3.4.3. Khảo sát tính kháng khuẩn của các loại cao . 31 3.4.4. Chiết xuất một số hợp chất cao chloroform 32 3.4.4.1. Sắc cột 32 3.4.4.2. Sắc lớp mỏng 35 3.4.4.3. Sắc điều chế 37 3.4.4.4. Kỹ thuật kết tinh phân đoạn . 38 3.4.5. Khảo sát tính kháng khuẩn của các phân đoạn đƣợc tách chiết từ cao chloroform . 38 3.4.6. Thử nghiệm hoạt tính chống oxy hóa DPPH 40 3.4.6.1. Các tính chất của gốc tự do DPPH . 40 3.4.6.2. Quy trình thử hoạt tính chống oxy hóa DPPH . 40 4. KẾT QUẢ THẢO LUẬN 44 4.1. Thử nghiệm khả năng kháng khuẩn của các loại cao chiết 44 4.2. Kết quả tách chiết của cao chloroform các phân đoạn của chúng 45 4.2.1. Kết quả tách chiết của cao chloroform 45 4.2.2. Khảo sát phân đoạn XH9, XH10, XH11, XH13. 47 4.2.2.1. Phân đoạn XH11 47 4.2.2.2. Phân đoạn XH9 XH10 . 47 4.2.2.3. Phân đoạn XH13 48 4.3. Cấu trúc hóa học của các chất tinh khiết. . 49 x 4.3.1. Chất XH-K13 49 4.3.2. Chất XH-K11 50 4.4. Thử nghiệm khả năng kháng khuẩn của các phân đoạn đƣợc chiết từ cao chloroform. 52 4.5. Kết quả của thử nghiệm chống oxy hóa . 55 4.5.1. Kết quả đo OD đối với vitamin C . 55 4.5.2. Kết quả đo OD đối với dịch chiết lá Xuân Hoa 56 5. KẾT LUẬN ĐỀ NGHỊ . 58 5.1. Kết luận 58 5.2. Đề nghị . 59 TÀI LIỆU THAM KHẢO . 60 PHỤ LỤC 62 [...]... chất kháng oxy hóa có nguồn gốc từ thực vật có tác dụng ngăn chặn quá trình oxy hóa không mong muốn nhƣ 2 các carotenoid, flavonoid, vitamin C, E…Vì thế trong công trình này chúng tôi cũng khảo sát khả năng chống oxy hóa của các hợp chất trong lá Xuân Hoa Xuất phát từ yêu cầu trên, chúng tôi thực hiện đề tài: Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết, khảo sát tính kháng khuẩn khả năng chống oxy hóa của. .. một số hợp chất thứ cấp từ lá Xuân Hoa (Pseudranthemum palatiferum)” 1.2 Mục đích – Yêu cầu 1.2.1 Mục đích Xác định đƣợc cao chloroform có hoạt tính kháng khuẩn mạnh nhất Chiết tách một số hợp chất thứ cấp từ cao chloroform Xác định phân đoạn kháng vi khuẩn: E.coli, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa Chiết tách một số hợp chất thứ cấp từ phân đoạn kháng khuẩn Khảo sát khả năng chống oxy hóa. .. vi khuẩn đây là thành phần kháng nguyên của vách tế bào Là một phức hợp protein, poliozid lipid, trong đó protein làm cho phức hợptính kháng nguyên, poliozid quy t định tính đặc hiệu kháng nguyên còn lipid quy t địng tính độc Không bị phá huỷ ở 100oC trong hai giờ hoặc trong cồn 50% nhƣng bị mất tính kháng nguyên khi xử lý bằng formol 0,5 % Ở những vi khuẩn không có vỏ hoặc màng bọc (không có kháng. .. khác nhau: 0,8 3 g/kg; 1,6 7 g/kg; 3,1 3 g/kg; 5,5 6 g/kg; 9,1 9 g/kg; 1 1,5 g/kg thể trọng chuột Quan sát diễn biến hành vi, sau đó giết ngẫu nhiên 3 chuột ở 3 lô khác 6 nhau: quan sát đại thể phủ tạng làm vi thể các cơ quan chịu tác dụng của thuốc nhƣ tim - gan - thận - dạ dày - ruột - Kết quả: o Ở các liều: 0,8 3 g/kg; 1,6 7 g/kg; 3,1 3 g/kg thể trọng chuột, sau khi uống thuốc trong suốt quá trình thử... có khả năng sinh ngoại độc tố nhƣ S.Shiga, E.Coli loại Enterotoxigenic E.Coli (ECET) Ngoại độc tố của S.Shiga làm cho bệnh lỵ nặng hơn rất nhiều, ngoại độc tố LT (Labile Toxin) của ETEC là yếu tố quy t định độc lực của vi khuẩn này 2.5.7 Cấu trúc kháng nguyên Họ vi khuẩn đƣờng ruột có 3 nhóm kháng nguyên cơ bản: kháng nguyên O, kháng nguyên H kháng nguyên K - Kháng nguyên O: Là kháng nguyên thân của. .. khả năng di động khi tiếp xúc với kháng thể H tƣơng ứng sẽ trở thành không di động Kháng nguyên O kháng nguyên H có thể đƣợc sản xuất riêng để phát hiện riêng biệt các kháng thể tƣơng ứng Để có kháng nguyên O, ngƣời ta cho vi khuẩn này vào cồn 50 %, kháng nguyên H sẽ bị phá hu , kháng nguyên O vẫn tồn tại Để có kháng nguyên H ngƣời 20 ta cho vi khuẩn vào formol 0,5 % thì kháng nguyên O bị phá hu ,. .. phát theo thứ tự là: 7,1 4%; 9,5 2%; 1 4,2 9% Bảng 2.6: So sánh hiệu quả chữa trị tiêu chảy Số lƣợng heo khỏi bệnh sau khi điều trị Số heo Loại thuốc thử Ngày thứ nhất nghiệm Số con Bột Xuân Hoa Coli-norgen % Ngày thứ hai Số con % Ngày thứ ba Số con % 42 10 2 3,8 1 29 6 9,0 5 39 9 2,8 6 42 10 2 3,8 1 25 5 9,5 2 38 9 0,4 8 12 Cotrimxazol 42 15 3 5,7 1 28 6 6,6 7 35 8 3,3 3 Nhận xét: Không có tác dụng phụ của lá Xuân Hoa đối... phổi, viêm thận cấp, viêm tuyến sữa viêm tủy xƣơng 2.6.2 Pseudomonas aeruginosa - Là vi khuẩn gram âm, có tiêm mao, vi khuẩn sinh sắc tố màu xanh - Khả năng gây bệnh: o Gây bệnh mủ xanh ở động vật ngƣời o Viêm bàng quang, viêm tai có mủ ở ngƣời 2.6.3 Escherichia coli (E.coli) - Là vi khuẩn gram âm, không bào tử - Sức đề kháng: Nhạy cảm với chloraphenicol, Streptomycin, Sunfamid, Trimethroprim - Khả. .. ngoại…các loại oxy hoạt tính cao này vƣợt quá 23 giới hạn cho phép sẽ là nguồn gây bệnh, thúc đẩy nhanh quá trình lão hóa cho sinh vật Các chất chống oxy hóa từ thực vật đã góp phần hỗ trợ cho hệ thống bảo vệ của cơ th , ngăn chặn oxy hóa không mong muốn nhƣ các carotenoid, flavonoid, vitamin C, E các hợp chất trao đổi chất thứ cấp từ thực vật đã đang đƣợc quan tâm nghiên cứu ... khuẩn gây tiêu chảy Cơ chế gây bệnh, vị trí gây tổn thƣơng ở bộ máy tiêu hóa rất khác nhau tuỳ theo từng giống, từng loài Ngoài đƣờng tiêu hóa, các vi khuẩn đƣờng ruột còn có khả năng gây bệnh ở nhiều cơ quan khác nhƣ tiết niệu, thần kinh, hô hấp…Các thành viên của họ này đứng đầu trong các vi khuẩn gây viêm đƣờng tiết niệu, bỏ xa các vi khuẩn khác Chúng cũng đứng đầu trong các vi khuẩn gây nhiễm khuẩn . ************************** XÂY DỰNG QUY TRÌNH KỸ THUẬT TÁCH CHIẾT, KHẢO SÁT TÍNH KHÁNG KHUẨN VÀ KHẢ NĂNG KHÁNG OXY HÓA CỦA MỘT SỐ HỢP CHẤT THỨ CẤP TỪ LÁ CÂY. LUẬN TỐT NGHIỆP XÂY DỰNG QUY TRÌNH KỸ THUẬT TÁCH CHIẾT, KHẢO SÁT TÍNH KHÁNG KHUẨN VÀ KHẢ NĂNG CHỐNG OXY HÓA CỦA MỘT SỐ HỢP CHẤT THỨ CẤP TỪ LÁ CÂY XUÂN

Ngày đăng: 06/11/2012, 09:50

Hình ảnh liên quan

2.1.2. Đặc điểm hình thái [2, 6] - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

2.1.2..

Đặc điểm hình thái [2, 6] Xem tại trang 16 của tài liệu.
Bảng 2.1: Kết quả quan sát vi thể ở chuột - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Bảng 2.1.

Kết quả quan sát vi thể ở chuột Xem tại trang 20 của tài liệu.
- Mô hình gây ngộ độc gan: Gây tổn thƣơng gan chuột nhắt bằng carbon tetrachloride  (CCl 4)  theo  phƣơng  pháp  đƣợc  dung  thông  thƣờng  (Shibayama,  1989;  Yoshitake  và  cộng  sự,  1991)  với  liều  1ml  CCl 4/kg  thể  trọng  (liều  cao)  hoặc 0,5 ml - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

h.

ình gây ngộ độc gan: Gây tổn thƣơng gan chuột nhắt bằng carbon tetrachloride (CCl 4) theo phƣơng pháp đƣợc dung thông thƣờng (Shibayama, 1989; Yoshitake và cộng sự, 1991) với liều 1ml CCl 4/kg thể trọng (liều cao) hoặc 0,5 ml Xem tại trang 21 của tài liệu.
Bảng 2.3: Hàm lƣợng MDA ở liều gây là 0,5ml CCl4/kg thể trọng chuột. - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Bảng 2.3.

Hàm lƣợng MDA ở liều gây là 0,5ml CCl4/kg thể trọng chuột Xem tại trang 22 của tài liệu.
- Ở lô có sử dụng cao Xuân Hoa hàm lƣợng MDA có giảm so với lô gây mô hình (giảm từ 14,1156 xuống còn 10,7091) - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

l.

ô có sử dụng cao Xuân Hoa hàm lƣợng MDA có giảm so với lô gây mô hình (giảm từ 14,1156 xuống còn 10,7091) Xem tại trang 22 của tài liệu.
- Xét nghiệm vi thể: ở lô chuột có sử dụng cao Xuân Hoa và lô gây mô hình nhận thấy  rằng  các  tế  bào  ở  vùng  thoái  hoá  đã  bắt  đầu  thu  nhỏ  và  có  xu  hƣớng  hồi  phục - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

t.

nghiệm vi thể: ở lô chuột có sử dụng cao Xuân Hoa và lô gây mô hình nhận thấy rằng các tế bào ở vùng thoái hoá đã bắt đầu thu nhỏ và có xu hƣớng hồi phục Xem tại trang 23 của tài liệu.
Hình 3.2: Cột sắc ký - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Hình 3.2.

Cột sắc ký Xem tại trang 46 của tài liệu.
cho dung môi bay đi, đặt bảng vào bình khai triển sắc ký, có chứa 50ml hỗn hợp dung môi giải ly - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

cho.

dung môi bay đi, đặt bảng vào bình khai triển sắc ký, có chứa 50ml hỗn hợp dung môi giải ly Xem tại trang 50 của tài liệu.
Bảng 3.1: Thể tích và nồng độ các ống nghiệm. - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Bảng 3.1.

Thể tích và nồng độ các ống nghiệm Xem tại trang 52 của tài liệu.
Bảng 3.2: Độ pha loãng và nồng độ mẫu Xuân Hoa - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Bảng 3.2.

Độ pha loãng và nồng độ mẫu Xuân Hoa Xem tại trang 54 của tài liệu.
Bảng 3.3: Độ pha loãng và nồng độ vitamin C. - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Bảng 3.3.

Độ pha loãng và nồng độ vitamin C Xem tại trang 55 của tài liệu.
Hình 3.5: Các nồng độ pha loãng của vitami nC (bên trái) và mẫu Xuân Hoa (bên phải) sau khi cho DPPH vào - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Hình 3.5.

Các nồng độ pha loãng của vitami nC (bên trái) và mẫu Xuân Hoa (bên phải) sau khi cho DPPH vào Xem tại trang 56 của tài liệu.
Bảng 4.1: Kết quả thử nghiệm khả năng kháng khuẩn của 4 loại cao. - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Bảng 4.1.

Kết quả thử nghiệm khả năng kháng khuẩn của 4 loại cao Xem tại trang 57 của tài liệu.
Bảng 4.2: Kết quả sắc ký cột trên cao chloroform. - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Bảng 4.2.

Kết quả sắc ký cột trên cao chloroform Xem tại trang 58 của tài liệu.
Hình 4.2: Chất XH-K11 trên bản mỏng - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Hình 4.2.

Chất XH-K11 trên bản mỏng Xem tại trang 60 của tài liệu.
Mặt khác kết hợp dấu hiệu định tính trên bảng mỏng khi sắc ký lớp mỏng có màu tím khi phun H 2SO4 10%, sau đó hơ nóng, cho phép giả thiết khung aglycon của XH-K13  là một Sterol có 29 cacbon chứa nối đôi ở vị trí 5-6 kết hợp với đƣờngGlucose, phù  hợp với - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

t.

khác kết hợp dấu hiệu định tính trên bảng mỏng khi sắc ký lớp mỏng có màu tím khi phun H 2SO4 10%, sau đó hơ nóng, cho phép giả thiết khung aglycon của XH-K13 là một Sterol có 29 cacbon chứa nối đôi ở vị trí 5-6 kết hợp với đƣờngGlucose, phù hợp với Xem tại trang 63 của tài liệu.
Bảng 4.3: Nồng độ ức chế vi khuẩn tối thiểu của các phân đoạn. - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Bảng 4.3.

Nồng độ ức chế vi khuẩn tối thiểu của các phân đoạn Xem tại trang 65 của tài liệu.
Hình 4.4: Kết quả thử nghiệm các phân đoạn kháng E. coli. - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Hình 4.4.

Kết quả thử nghiệm các phân đoạn kháng E. coli Xem tại trang 65 của tài liệu.
Hình 4.6: Các nồng độ kháng Staphylococcus aureus của phân đoạn XH9. - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Hình 4.6.

Các nồng độ kháng Staphylococcus aureus của phân đoạn XH9 Xem tại trang 66 của tài liệu.
Hình 4.5: Các nồng độ kháng E.coli của phân đoạn XH9. - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Hình 4.5.

Các nồng độ kháng E.coli của phân đoạn XH9 Xem tại trang 66 của tài liệu.
Hình 4.7: Các nồng độ kháng Pseudomonas aeruginosa của XH9. - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Hình 4.7.

Các nồng độ kháng Pseudomonas aeruginosa của XH9 Xem tại trang 67 của tài liệu.
Bảng 4.6: So sánh khả năng kháng oxy hóa của vitami nC và dịch chiết lá Xuân Hoa: Độ hấp thụ của  DPPH Độ hấp thụ của (DPPH +  - Xây dựng quy trình kỹ thuật tách chiết , khảo sát tính kháng khuẩn và khả năng chống oxy hóa của q số hợp chất.

Bảng 4.6.

So sánh khả năng kháng oxy hóa của vitami nC và dịch chiết lá Xuân Hoa: Độ hấp thụ của DPPH Độ hấp thụ của (DPPH + Xem tại trang 69 của tài liệu.

Từ khóa liên quan

Tài liệu cùng người dùng

  • Đang cập nhật ...

Tài liệu liên quan