Đang tải... (xem toàn văn)
Nghiên cứu chế tạo bộ cảm biến sinh học điện hóa trên cơ sở các vật liệu nano vàng, bạc oxide graphene khử để phát hiện một số vi khuẩn gây bệnh .Nghiên cứu chế tạo bộ cảm biến sinh học điện hóa trên cơ sở các vật liệu nano vàng, bạc oxide graphene khử để phát hiện một số vi khuẩn gây bệnh
BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA HÀ NỘI - - Vũ Quang Khuê NGHIÊN CỨU CHẾ TẠO BỘ CẢM BIẾN ĐIỆN HÓA TRÊN CƠ SỞ CÁC VẬT LIỆU NANO VÀNG, BẠC-OXIDE GRAPHENE KHỬ ĐỂ PHÁT HIỆN MỘT SỐ VI KHUẨN GÂY BỆNH LUẬN ÁN TIẾN SĨ KHOA HỌC VẬT LIỆU HÀ NỘI - 2020 BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA HÀ NỘI - - Vũ Quang Khuê NGHIÊN CỨU CHẾ TẠO BỘ CẢM BIẾN ĐIỆN HÓA TRÊN CƠ SỞ CÁC VẬT LIỆU NANO VÀNG, BẠC-OXIDE GRAPHENE KHỬ ĐỂ PHÁT HIỆN MỘT SỐ VI KHUẨN GÂY BỆNH Ngành: Khoa học vật liệu Mã số : 9440122 LUẬN ÁN TIẾN SĨ KHOA HỌC VẬT LIỆU NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: TS VŨ NGỌC PHAN TS TRẦN QUANG HUY HÀ NỘI - 2020 LỜI CAM ĐOAN Tơi xin cam đoan cơng trình nghiên cứu riêng hướng dẫn tập thể giáo viên hướng dẫn Các số liệu, kết nghiên cứu trung thực chưa cơng bố cơng trình khác Tập thể hướng dẫn TS Vũ Ngọc Phan TS Trần Quang Huy Tác giả luận án Vũ Quang Khuê LỜI CẢM ƠN Với lịng kính trọng, tơi xin bày tỏ biết ơn TS Vũ Ngọc Phan TS Trần Quang Huy dẫn quý báu phương pháp luận định hướng nghiên cứu, tận tình hướng dẫn tơi, động viên, khích lệ hết lịng giúp đỡ để luận án hồn thành Tơi xin bày tỏ lời cảm ơn Ban giám đốc, toàn thể cán bộ, giáo viên Viện Tiên tiến Khoa học Công nghệ (AIST), Trường Đại học Bách khoa Hà Nội Các cán nghiên cứu Trung tâm nghiên cứu Y sinh, Phịng thí nghiệm Siêu cấu trúc, Viện Vệ sinh Dịch tễ Trung ương Trường Cao đẳng Công nghiệp Bắc Ninh tạo điều kiện thuận lợi sở vật chất thời gian, hỗ trợ chun mơn để tác giả hồn thành luận án Tôi xin chân thành cảm ơn sâu sắc tới GS.TS Lê Anh Tuấn - Viện Nghiên cứu Nano - Trường Đại học Phenikaa tất thành viên nhóm nghiên cứu Vật liệu Nano Y sinh Mơi trường (NEB) nhiệt tình giúp đỡ để tơi hồn thành luận án Tôi xin dành lời cảm ơn sâu nặng đến gia đình tơi: bố, mẹ, vợ, yêu thương, người thân bạn bè cảm thông chia sẻ, động viên, hỗ trợ điều kiện để tơi tập trung học tập nghiên cứu suốt năm tháng học tập trường Đại học Bách khoa Hà Nội Xin chân thành cảm ơn giúp đỡ kinh phí từ nguồn học bổng cho đào tạo nghiên cứu sinh Bộ Giáo dục Đào tạo (đề án 911), nhiệm vụ Nghị định thư phủ Việt Nam phủ Italia, mã số nhiệm vụ: NĐT.05.ITA/15, đề tài Khoa học công nghệ tỉnh Bắc Ninh: KCBN-(08).18 Xin chân thành cảm ơn! Tác giả luận án Vũ Quang Khuê MỤC LỤC Trang DANH MỤC CÁC KÝ HIỆU, CHỮ VIẾT TẮT i DANH MỤC CÁC BẢNG BIỂU iii DANH MỤC CÁC HÌNH VẼ, ĐỒ THỊ iv MỞ ĐẦU Chương TỔNG QUAN 1.1 Cảm biến sinh học nhiễm trùng bệnh viện 1.1.1 Cảm biến sinh học cảm biến sinh học điện hóa 1.1.2 Tình hình nghiên cứu cảm biến sinh học nước 1.1.3 Nhiễm trùng bệnh viện 11 1.1.4 Vi khuẩn gây bệnh nhiễm trùng bệnh viện 13 1.2 Cảm biến sinh học cở sở SPE phát vi khuẩn gây bệnh 15 1.2.1 Điện cực in lưới cacbon- SPE 15 1.2.2 Vật liệu nano kim loại quý để biến tính điện cực 16 1.2.2.1 Vật liệu nano vàng 16 1.2.2.2 Vật liệu nano lai bạc - oxide graphene khử 17 1.2.3 Vật liệu nano kim loại quý biến tính điện cực SPE 17 1.2.4 Phương pháp biến tính SPE 19 1.3 Các phương pháp cố định kháng thể bề mặt điện cực 21 1.3.1 Kháng nguyên, kháng thể 21 1.3.2 Liên kết cộng hóa trị 22 1.3.3 Ái lực sinh học 24 1.3.4 Hấp phụ vật lý 24 1.4 Kỹ thuật đo điện hóa cảm biến sinh học 25 1.4.1 Phương pháp qt vịng tuần hồn (CV) 26 1.4.2 Phương pháp đo Von - Ampe xung vi sai (DPV) 28 1.4.3 Phương pháp phổ tổng trở điện hóa (EIS) 29 1.5 Thiết bị cầm tay cho cảm biến sinh học 31 Chương CHẾ TẠO CẢM BIẾN ĐIỆN HÓA TRÊN CƠ SỞ ĐIỆN CỰC IN LƯỚI CACBON BIẾN TÍNH VỚI BẠC-OXIDE GRAPHENE KHỬ 35 2.1 Đặt vấn đề 36 2.2 Vật liệu phương pháp 37 2.2.1 Vật liệu, hóa chất 37 2.2.2 Đảm bảo an toàn sinh học 37 2.2.3 Quy trình chế tạo vật liệu nano lai AgNPs-rGO 37 2.2.4 Biến tính điện cực in lưới cacbon vật liệu bạc-oxide graphene 38 2.2.5 Cố định kháng thể lên bề mặt điện cực biến tính 39 2.2.6 Khảo sát khả phát vi khuẩn Salmonella 40 2.3 Kết thảo luận 41 2.3.1 Sự hình thành hạt bạc graphene oxít 41 2.3.2 Hình thái kích thước hạt nano bạc graphene oxít 43 2.3.3 Khảo sát hình thái bề mặt điện cực biến tính 44 2.3.4 Đặc tuyến điện hóa điện cực biến tính 46 2.3.4.1 Đặc tuyến điện hóa điện cực biến tính 46 2.3.4.2 Đặc trưng tín hiệu cố định kháng thể 48 2.3.5 Phổ hấp thụ xạ hồng ngoại biến đổi Fourie 50 2.3.6 Phát vi khuẩn Salmonella 51 2.3.7 Độ chọn lọc giới hạn phát vi khuẩn Salmonella 53 2.4 Kết luận chương 55 Chương CHẾ TẠO CẢM BIẾN ĐIỆN HÓA TRÊN CƠ SỞ ĐIỆN CỰC IN LƯỚI CACBON BIẾN TÍNH 57 HẠT NANO VÀNG (AuNPs) 57 3.1 Đặt vấn đề 58 3.2 Vật liệu phương pháp 59 3.2.1 Vật liệu, hóa chất 59 3.2.2 Đảm bảo an toàn sinh học 59 3.2.3 Quy trình chế tạo hạt nano vàng 59 3.2.4 Biến tính điện cực in lưới cacbon hạt nano vàng 60 3.2.5 Cố định kháng thể liên kết cộng hóa trị 60 3.2.6 Khảo sát cảm biến phát vi khuẩn E.coli O157 MRSA 61 3.3 Kết thảo luận 62 3.3.1 Hình thái kích thước hạt nano vàng 62 3.3.1.1 Sự hình thành hạt nano vàng phụ thuộc vào điện áp điện hóa 62 3.3.1.2 Sự hình thành hạt nano vàng phụ thuộc vào thời gian điện hóa 63 3.3.1.3 Hình thái kích thước hạt nano vàng quan sát TEM 65 3.3.2 Khảo sát hình thái bề mặt điện cực biến tính 67 3.3.3 Đặc tuyến điện hóa điện cực biến tính 68 3.3.4 Điện cực biến tính phụ thuộc kích thước hạt nano vàng 71 3.3.5 Đặc trưng tín hiệu cố định kháng thể 73 3.3.6 Khảo sát khả phát vi khuẩn E.coli O157 cảm biến 74 3.3.6.1 Phát vi khuẩn E.Coli O157 74 3.3.6.2 Độ nhạy độ chọn lọc cảm biến 74 3.3.6.3 Thời gian sống cảm biến 76 3.3.7 Khảo sát phát vi khuẩn MRSA cảm biến 77 3.4 Kết luận chương 82 Chương CHẾ TẠO CẢM BIẾN ĐIỆN HÓA TRÊN CƠ SỞ ĐIỆN CỰC IN LƯỚI CACBON BIẾN TÍNH MÀNG NANO VÀNG 84 4.1 Đặt vấn đề 85 4.2 Vật liệu phương pháp 86 4.2.1 Vật liệu, thiết bị 86 4.2.2 Đảm bảo an toàn sinh học phương pháp phát vi khuẩn MRSA 86 4.2.3 Biến tính bề mặt điện cực SPE 87 4.3 Kết thảo luận 87 4.3.1 Hình thái bề mặt điện cực quan sát kính hiển vi điện tử quét 87 4.3.2 Khảo sát đặc tuyến điện hóa điện cực biến tính 89 4.3.3 Đặc tuyến điện hóa điện cực biến tính phụ thuộc chiều dày màng nano vàng 90 4.3.4 Diện tích hoạt động điện hóa điện cực biến tính 92 4.3.5 Đặc trưng tín hiệu cố định kháng thể 93 4.3.6 Phổ hấp thụ xạ hồng ngoại biến đổi Fourier 94 4.3.7 Phát vi khuẩn MRSA 95 4.4 Kết luận chương 97 Chương CHẾ TẠO THIẾT BỊ ĐO CẦM TAY CHO CẢM BIẾN ĐIỆN HÓA 99 5.1 Đặt vấn đề 100 5.2 Vật liệu phương pháp 101 5.2.1 Vật liệu linh kiện 101 5.2.2 Thiết kế khối thiết bị 101 5.2.2.1 Các khối 102 5.2.2.2 Khối phát tín hiệu tới cảm biến 103 5.2.2.3 Khối giao tiếp hiển thị 104 5.2.2.4 Khối xử lý trung tâm 105 5.2.2.5 Thiết kế vỏ hệ đo 106 5.3 Kết thảo luận 107 5.3.1 Bảng mạch chủ tín hiệu thực nghiệm 107 5.3.2 Phần mềm tích hợp thiết bị đo 108 5.3.3 Thông số kỹ thuật thiết bị đo 109 5.3.4 Các bước thực nghiệm với hệ đo 110 5.4 Kết luận chương 112 KẾT LUẬN CHUNG 113 KIẾN NGHỊ VÀ ĐỀ XUẤT 114 XÁC NHẬN THỬ NGHIỆM CỦA BỘ THIẾT BỊ CẢM BIẾN ĐIỆN HĨA 115 DANH MỤC CÁC CƠNG TRÌNH ĐÃ CÔNG BỐ CỦA LUẬN ÁN 116 QUYẾT ĐỊNH CHẤP NHẬN ĐƠN GIẢI PHÁP HỮU ÍCH 117 TÀI LIỆU THAM KHẢO 118 DANH MỤC CÁC KÝ HIỆU, CHỮ VIẾT TẮT Viết tắt Ab ADC Ag AgNPs DNA APTES RNA AuNFs AuNPs BSA EID50 CE CEA CFU CNC CNTs CV DI DPV EDX EIS ELISA FET FTIR GA GC GMBS GO HCW IC LCD LOD LSV Từ tiếng Anh đầy đủ Antibody Analog to digital converter Antigen Silver nanoparticles Deoxyribonucleic acid 3-aminopropyl–triethoxy silane Ribonucleic acid Gold nano films Gold nanoparticles Bovine serum albumin 50% Empryo infective dose Counter electrode Carcinoma Embryonic Antigen Colony Forming Unit Computer numerical control Carbon nanotubes Cyclic Voltammetry Deionized Water Differential Pulse Voltammetry Energy-dispersive X-ray spectroscopy Electrochemical Impedance Spectroscopy Enzyme linked immunosorbent assay Field-effect transistor Fourier transform infrared spectroscopy Glutaraldehyde Graphene carbon Gamma-maleimidobutyrloxy sulphosuccinimide Graphene oxide Health care worker Integrated circuit Liquid crystal display Limit of detection Linear Sweep Voltammetry i Nghĩa tiếng Việt Kháng thể Chuyển đổi tương tự - số Kháng nguyên Hạt nano bạc Axit deoxyribonucleic 3-aminopropyl–triethoxy-silan Axít ribonucleic Màng nano vàng Hạt nano vàng Albumin huyết bị Liều gây nhiễm phơi 50% Điện cực đối Kháng nguyên ung thư biểu mô phôi Đơn vị lạc khuẩn Điều khiển số máy tính Ống nano cacbon Qt vịng tuần hồn Nước khử ion Đo Von - Ampe xung vi sai Phổ tán sắc lượng tia X Đo phổ tổng trở điện hóa Kỹ thuật miễn dịch hấp phụ gắn men Transistor trường Phổ hồng ngoại biến đổi Fourier Glutaraldehyde Graphene cacbon Nhóm chức NHS Graphen oxít Nhân viên y tế Mạch tích hợp Màn hình tinh thể lỏng Giới hạn phát Đo xung tuyến tính L-W-H MA MRSA Length - Width - High Multistep Amperometry methicillin-resistant Staphylococcus aureus MTS Mercaptopropyltrimethoxysilane MWNCTs Mutil walled carbon nanotubes NHS N-Hydroxysuccinimide OCP Open Circuit Potentionmetry PBS Phosphate buffered saline PC Personal Computer PCR Polymerase chain reaction PrA Protein A Pt Platinum Rct Resistor charge transfer RE Reference electrode S/N Signal/noise SAM Self-assembled monolayer SEM Scanning electron microscopy SPE Screen printed electrode SWNCTs Sigle wall carbon nanotubes TEM Transmission electron microscopy USB Universal Serial Bus USD United States Dollar UV Ultraviolet WE Working electrode WHO World Health Organization ii Dài - rộng - cao Đo dòng đa bước Khuẩn tụ cầu vàng Mercaptopropyl-trimethoxysilane Ống nano cacbon đa vách N-Hydroxysuccinimide Đo dòng mở Dung dịch đệm phosphate Máy tính để bàn Phản ứng chuỗi polymerase Protein A Platin Điện trở chuyển tích Điện cực chuẩn Tín hiệu/nhiễu Đơn lớp tự xếp Hiển vi điện tử quét Điện cực in lưới Ống nano cacbon đơn vách Hiển vi điện tử truyền qua Kết nối chuẩn USB Đôla Mỹ Tử ngoại Điện cực làm việc Tổ chức Y tế giới DANH MỤC CÁC BẢNG BIỂU Trang Bảng 1.1: Tổng hợp số kết nghiên cứu giới cảm biến điện hóa phát vi khuẩn Salmonella Bảng 1.2: Tổng hợp số kết nghiên cứu cảm biến sinh học điện hóa Việt Nam 10 Bảng 2.1: Các giá trị Ipeak, Ip,a, Ip,c từ kế thực nghiệm đo CV điện cực SPE trạng thái bước biến tính cố định kháng thể 49 Bảng 2.2: Tổng hợp giá trị Ip,a, Ip,c, Ipeak and ∆Ipeak từ phương pháp đo CV cảm biến sinh học dò tìm vi khuẩn Salmonella nồng độ khác 52 Bảng 2.3: So sánh kết phát vi khuẩn Salmonella số phương pháp, loại cảm biến sinh học điện hóa 54 Bảng 3.1: Tổng hợp thơng số điện hóa thu từ kết đo CV EIS điện cực SPE trần, SPE/AuNPs 70 Bảng 3.2: Tổng hợp thông số điện hóa thu từ kết đo CV điện cực SPE trần, SPE/AuNPs-10 nm , SPE/AuNFs-15 nm SPE/AuNPs-25 nm 72 Bảng 3.3: Tổng hợp thơng số điện hóa thu từ kết đo EIS điện cực SPE trần, SPE/AuNPs-10 nm, SPE/AuNFs-15 nm SPE/AuNPs-25 nm 72 Bảng 3.4: Tổng hợp thơng số điện hóa thu từ kết đo DPV điện cực SPE trần, SPE/AuNPs-10 nm, SPE/AuNFs-15 nm SPE/AuNPs-25 nm 72 Bảng 3.5: Các giá trị Ip,a, Ip,c, Ipeak tính tốn từ phép đo CV điện cực SPE/AuNPs sau bước cố định kháng thể 73 Bảng 3.6: Các giá trị Rct tính toán từ việc FIT sử dụng phần mềm Equivalent circuit analysis phép đo EIS cảm biến miễn dịch chế tạo điện cực SPE/AuNPs phát vi khuẩn E.coli nồng độ khác 75 Bảng 3.7: Tổng hợp kết nghiên cứu công bố thời gian gần sử dụng điện cực SPE biến tính vật liệu nano phát số tác nhân gây bệnh 78 Bảng 4.1: Tổng hợp thơng số điện hóa thu từ kết đo CV EIS điện cực SPE trần, SPE/AuNFs 90 Bảng 4.2: Tổng hợp thơng số điện hóa thu từ kết đo CV điện cực SPE trần, SPE/AuNFs-10 nm , SPE/AuNFs-20 nm SPE/AuNFs-30 nm 91 Bảng 4.3: Tổng hợp thơng số điện hóa thu từ kết đo EIS điện cực SPE trần, SPE/AuNFs-10 nm , SPE/AuNFs-20 nm SPE/AuNFs-30 nm 91 Bảng 4.4: Diện tích hoạt động điện hóa điện cực biến tính tỷ lệ diện tích hoạt động điện hóa so với diện tích hình học điện cực SPE biến tính vật liệu nano vàng 92 Bảng 4.5: Các giá trị Ip,a, Ip,c, Ipeak tính tốn từ phép đo CV điện cực SPE/AuNFs sau bước cố định kháng thể 94 Bảng 4.6: Tổng hợp giá trị điện trở Rct theo nồng độ vi khuẩn MRSA 97 iii immunomagnetic separation,” Talanta, vol 148 [76] M Xu, R Wang, and Y Li, (2016), “An electrochemical biosensor for rapid detection of E coli O157:H7 with highly efficient bi-functional glucose oxidase-polydopamine nanocomposites and Prussian blue modified screenprinted interdigitated electrodes,” Analyst, vol 141, no 18, pp 5441–5449 [77] Y H Lin et al., (2008), “Disposable amperometric immunosensing strips fabricated by Au nanoparticles-modified screen-printed carbon electrodes for the detection of foodborne pathogen Escherichia coli O157:H7,” Biosens Bioelectron., vol 23, no 12, pp 1832–1837 [78] N Hiremath, R Guntupalli, V Vodyanoy, B A Chin, and M K Park, (2015), “Detection of methicillin-resistant Staphylococcus aureus using novel lytic phage-based magnetoelastic biosensors,” Sensors Actuators, B Chem., vol 210, pp 129–136 [79] A Baradoke, B Jose, R Pauliukaite, and R J Forster, (2019), “Properties of Anti-CA125 antibody layers on screen-printed carbon electrodes modified by gold and platinum nanostructures,” Electrochim Acta, vol 306, pp 299–306 [80] R K Jha, P K Jha, K Chaudhury, S V S Rana, and S K Guha, (2014), “An emerging interface between life science and nanotechnology: present status and prospects of reproductive healthcare aided by nanobiotechnology,” Nano Rev., vol 5, no 1, p 22762 [81] P Tiwari, K Vig, V Dennis, and S Singh, (2011), “Functionalized Gold Nanoparticles and Their Biomedical Applications,” Nanomaterials, vol 1, no 1, pp 31–63 [82] C J Huang, P H Chiu, Y H Wang, K L Chen, J J Linn, and C F Yang, (2006), “Electrochemically controlling the size of gold nanoparticles,” J Electrochem Soc., vol 153, no 12, pp 193–198 [83] T T N Do et al., (2017), “Anisotropic In Situ-Coated AuNPs on ScreenPrinted Carbon Surface for Enhanced Prostate-Specific Antigen Impedimetric Aptasensor,” J Electron Mater., vol 46, no 6, pp 3542–3552 [84] D Davis, X Guo, L Musavi, C.-S Lin, S.-H Chen, and V C H Wu, (2013), “Gold Nanoparticle-Modified Carbon Electrode Biosensor for the Detection of Listeria monocytogenes,” Ind Biotechnol., vol 9, no 1, pp 31– 125 36 [85] L Tian, L Liu, Y Li, Q Wei, and W Cao, (2016), “Ultrasensitive sandwichtype electrochemical immunosensor based on trimetallic nanocomposite signal amplification strategy for the ultrasensitive detection of CEA,” Sci Rep., vol 6, no 1, p 30849 [86] F Okỗu, F N Erta, H I Gửkỗel, and H Tural, (2005), “Anodic stripping voltammetric behavior of mercury in chloride medium and its determination at a gold film electrode,” Turkish J Chem., vol 29, no 4, pp 355–366 [87] T Ung and L M Liz-marza, (2002), “Gold nanoparticle thin films.pdf,” vol 202, pp 119–126 [88] A Ressine et al., (2010), “Bioelectrochemical studies of azurin and laccase confined in three-dimensional chips based on gold-modified nano/microstructured silicon,” Biosens Bioelectron., vol 25, no 5, pp 1001– 1007 [89] T K Sau, A L Rogach, F Jäckel, T A Klar, and J Feldmann, (2010), “Properties and applications of colloidal nonspherical noble metal nanoparticles,” Adv Mater., vol 22, no 16, pp 1805–1825 [90] M R Das, R K Sarma, R Saikia, V S Kale, M V Shelke, and P Sengupta, (2011), “Synthesis of silver nanoparticles in an aqueous suspension of graphene oxide sheets and its antimicrobial activity,” Colloids Surfaces B Biointerfaces, vol 83, no 1, pp 16–22 [91] Y H Chen, R Kirankumar, C L Kao, and P Y Chen, (2016), Electrodeposited Ag, Au, and AuAg nanoparticles on graphene oxidemodified screen-printed carbon electrodes for the voltammetric determination of free sulfide in alkaline solutions", Electrochimica Acta, pp 216-223 [92] X Zhu, X Duan, J Xu, and L Lu, (2016), “A universal strategy for the facile synthesis of a sandwich-structured Pt–graphene–Pt nanocomposite for salbutamol sensing,” New J Chem., vol 40, no 1, pp 302–309 [93] T Q H Lê Anh Tuấn, Ngô Xuân Đinh, (2019), Vật liệu Nano Bạc: tổng hợp, tính chất ứng dụng công nghệ Nhà xuất Đại học Bách khoa Hà Nội [94] H Ma et al., (2016), “Hydrothermal Fabrication of Silver Nanowires-Silver 126 Nanoparticles-Graphene Nanosheets Composites in Enhancing Electrical Conductive Performance of Electrically Conductive Adhesives,” Nanomaterials, vol 6, no 6, p 119 [95] S X Lee, H N Lim, I Ibrahim, A Jamil, A Pandikumar, and N M Huang, (2017), “Horseradish peroxidase-labeled silver/reduced graphene oxide thin film-modified screen-printed electrode for detection of carcinoembryonic antigen,” Biosens Bioelectron., vol 89, pp 673–680 [96] Dropsens., (2016), “Screen-Printed Carbon Electrodes Electrochemical behaviour and electroanalytical performance of SPCEs for some benchmark redox systems,” pp 75–76 [97] X B Yin, B Qi, X Sun, X Yang, and E Wang, (2005), “4(Dimethylamino)butyric acid labeling for electrochemiluminescence detection of biological substances by increasing sensitivity with gold nanoparticle amplification,” Anal Chem., vol 77, no 11, pp 3525–353 [98] K Mao et al., (2012), “Label-free electrochemical immunosensor based on graphene/methylene blue nanocomposite,” Anal Biochem., vol 422, no 1, pp 22–27 [99] S Cinti and F Arduini, (2017), “Graphene-based screen-printed electrochemical (bio)sensors and their applications: Efforts and criticisms,” Biosens Bioelectron., vol 89, pp 107–122 [100] F Qu, H Lu, M Yang, and C Deng, (2011), “Electrochemical immunosensor based on electron transfer mediated by graphene oxide initiated silver enhancement,” Biosens Bioelectron., vol 26, no 12, pp 4810–4814 [101] B Su, D Tang, Q Li, J Tang, and G Chen, (2011), “Gold-silver-graphene hybrid nanosheets-based sensors for sensitive amperometric immunoassay of alpha-fetoprotein using nanogold-enclosed titania nanoparticles as labels,” Anal Chim Acta, vol 692, no 1–2, pp 116–124 [102] R Ahmad, O S Wolfbeis, Y B Hahn, H N Alshareef, L Torsi, and K N Salama, (2018), “Deposition of nanomaterials: A crucial step in biosensor fabrication,” Mater Today Commun., vol 17, pp 289–321 [103] M Wei and S Feng, (2017), 127 “Amperometric determination of organophosphate pesticides using a acetylcholinesterase based biosensor made from nitrogen-doped porous carbon deposited on a boron-doped diamond electrode,” Microchim Acta, vol 184, no 9, pp 3461–3468 [104] Đỗ Ngọc Liên, (2004), Miễn dịch học sở Nhà xuất Đại học Quốc Gia Hà Nội [105], (1984), “Antibody production and purification,” Lab Tech Biochem Mol Biol., vol 13, no C, pp 166–185 [106] W Putzbach and N J Ronkainen, (2013), “Immobilization techniques in the fabrication of nanomaterial-based electrochemical biosensors: a review,” Sensors, vol 13, no 4, pp 4811–4840 [107] S Vigneshvar, C C Sudhakumari, B Senthilkumaran, and H Prakash, (2016), “Recent Advances in Biosensor Technology for Potential Applications – An Overview,” Front Bioeng Biotechnol., vol 4, no February, pp 1–9 [108] F Rusmini, Z Zhong, and J Feijen, (2007), “Protein Immobilization Strategies for Protein Biochips,” Biomacromolecules, vol 8, no 6, pp 1775– 1789 [109] S K Bhatia et al., (1989), “Use of thiol-terminal silanes and heterobifunctional crosslinkers for immobilization of antibodies on silica surfaces,” Anal Biochem., vol 178, no 2, pp 408–413 [110] L T N Truong, M Chikae, Y Ukita, and Y Takamura, (2011), “Author’s personal copy Labelless impedance immunosensor based on polypyrrole– pyrolecarboxylic acid copolymer for hCG detection,” Talanta, vol 85, pp 2576–2580 [111] G T Hermanson, (2013), “(Strept)avidin–Biotin Systems,” Bioconjugate Tech., vol 11, pp 465–505 [112] Z Wang and G Jin, (2003), “Feasibility of protein A for the oriented immobilization of immunoglobulin on silicon surface for a biosensor with imaging ellipsometry,” J Biochem Biophys Methods, vol 57, no 3, pp 203–211 [113] Y Wang, X Zhang, N Han, Y Wu, and D Wei, (2018), “Oriented covalent immobilization of recombinant protein A on the glutaraldehyde activated agarose support,” Int J Biol Macromol., vol 120, pp 100–108 128 [114] K Khoshnevisan et al., (2017), “Immobilization of cellulase enzyme onto magnetic nanoparticles: Applications and recent advances,” Mol Catal., vol 442, pp 66–73 [115] Trương Ngọc Liên, (2000), Lý thuyết điện hóa Nhà xuất Khoa học Kỹ thuật [116] L R F A J Bard, (2001), Electrochemical Methods: Fundamentals and Applications John Wiley Sons, Inc [117] Y Ye et al., (2018), “A novel electrochemical biosensor for antioxidant evaluation of phloretin based on cell-alginate/ʟ-cysteine/gold nanoparticlemodified glassy carbon electrode,” Biosens Bioelectron., vol 119, pp 119– 125 [118] R Inam and G Somer, (2000), “A direct method for the determination of selenium and lead in cow’s milk by differential pulse stripping voltammetry,” Food Chem., vol 69, no 3, pp 345–350 [119] PiPat Chooto, (2019), Cyclic Voltammetry and Its Applications Intech Open [120] N Elgrishi, K J Rountree, B D McCarthy, E S Rountree, T T Eisenhart, and J L Dempsey, (2018), “A Practical Beginner’s Guide to Cyclic Voltammetry,” J Chem Educ., vol 95, no 2, pp 197–206 [121] M Lovrić and J Osteryoung, (1982), “Theory of differential normal pulse voltammetry,” Electrochim Acta, vol 27, no 7, pp 963–968 [122] S M Da Silva and L H Mazo, (1998), “Differential Pulse Voltammetric Determination of Nitrite with Gold Ultramicroelectrode,” Electroanalysis, vol 10, no 17, pp 1200–1203 [123] M Labib, E H Sargent, and S O Kelley, (2016), “Electrochemical Methods for the Analysis of Clinically Relevant Biomolecules,” Chemical Reviews, vol 116, no 16 p pp.16-20 [124] J W & S M.E Orazem and Bernard Tribollet, (2008), Electrochemical Impedance Spectroscopy [125] M Zarei, (2017), “Portable biosensing devices for point-of-care diagnostics: Recent developments and applications,” TrAC - Trends Anal Chem., vol 91, pp 26–41 129 [126] J Jiang et al., (2014), “Smartphone based portable bacteria preconcentrating microfluidic sensor and impedance sensing system,” Sensors Actuators, B Chem., vol 193, no 2014, pp 653–659 [127] E Noviana, C P McCord, K M Clark, I Jang, and C S Henry, (2019), “Electrochemical paper-based devices: sensing approaches and progress toward practical applications,” Lab Chip, p pp.65-7 [128] A C Sun, C Yao, V Ag, and D A Hall, (2016), “An efficient power harvesting mobile phone-based electrochemical biosensor for point-of-care health monitoring,” Sensors Actuators, B Chem., vol 235, pp 126–135 [129] S Hidehiro, S Rashid, I G Arcibal, and Pisano, (2014), “Lab on a Chip Lab on a Chip,” Lab Chip, no 207890, pp 613–621 [130] M Holzinger, A Le Goff, and S Cosnier, (2014), “Nanomaterials for biosensing applications: a review,” Front Chem., vol 2,pp 432-439 [131] P Pashazadeh, A Mokhtarzadeh, M Hasanzadeh, M Hejazi, M Hashemi, and M de la Guardia, (2017), “Nano-materials for use in sensing of salmonella infections: Recent advances,” Biosens Bioelectron., vol 87, pp 1050–1064 [132] K V Ragavan and S Neethirajan, (2018), “Nanoparticles as Biosensors for Food Quality and Safety Assessment,” Nanomater Food Appl., pp 147–202 [133] O D Renedo, M A Alonso-Lomillo, and M J A Martínez, (2007), “Recent developments in the field of screen-printed electrodes and their related applications,” Talanta, vol 73, no 2, pp 202–219 [134] N X Đinh, (2017), “Nghiên cứu chế tạo vật liệu nano lai sở hạt nano bạc nano carbon định hướng ứng dụng kháng khuẩn cảm biến quang sers,” Luận án Tiến sỹ: Trường Đại học Bách Khoa Hà Nội [135] J Zhou, L Du, L Zou, Y Zou, N Hu, and P Wang, (2014), “An ultrasensitive electrochemical immunosensor for carcinoembryonic antigen detection based on staphylococcal protein A - Au nanoparticle modified gold electrode,” Sensors Actuators, B Chem., vol 197, pp 220–227 [136] C Kan, C Wang, J Zhu, and H Li, (2010), “Formation of gold and silver nanostructures within polyvinylpyrollidone (PVP) gel,” J Solid State Chem., vol 183, no 4, pp 858–865 130 [137] K Gotoh et al., (2011), “Exfoliated graphene sheets decorated with metal/metal oxide nanoparticles: Simple preparation from cation exchanged graphite oxide,” Carbon N Y., vol 49, no 4, pp 1118–1125 [138] S W Chook, C H Chia, S Zakaria, M K Ayob, K L Chee, and Huang, (2012), “Antibacterial performance of Ag nanoparticles and AgGO nanocomposites prepared via rapid microwave-assisted synthesis method,” Nanoscale Res Lett., vol 7, pp 541–547 [139] L Zheng, G Zhang, M Zhang, S Guo, and Z H Liu, (2012), “Preparation and capacitance performance of Ag-graphene based nanocomposite,” J Power Sources, vol 201, pp 376–381 [140] M Wang, Y Song, M Wang, X Zhang, J Wu, and T Zhang, (2014), “Investigation on the role of the molecular weight of polyvinyl pyrrolidone in the shape control of high-yield silver nanospheres and Investigation on the role of the molecular weight of polyvinyl pyrrolidone in the shape control of high-yield silver n,” Nanoscale Res Lett., vol 9:17, pp 1–8 [141] P R.Griffiths, (2007), “Fourier transform infrared spectroscopy,” A John Wiley&Sons INS, pp 80–85 [142] M J Baker, J Trevisan, P Bassan, R Bhargava, H J Butler, and Dorling, (2014), “Using Fourier transform IR spectroscopy to analyze biological materials,” Nat Protoc., vol 9, no 8, pp 1771–1791 [143] T Petit and L Puskar, (2018), “FTIR spectroscopy of nanodiamonds: Methods and interpretation,” Diam Relat Mater., vol 89, no August, pp 52–66 [144] A Shrivastava and V Gupta, (2011), “Methods for the determination of limit of detection and limit of quantitation of the analytical methods,” Chronicles Young Sci., vol 2, no 1, pp 21–26 [145] Z Zhang, Q Wang, L Han, S Du, H Yu, and H Zhang, (2018), “Rapid and sensitive detection of Salmonella typhimurium based on the photothermal effect of magnetic nanomaterials,” Sensors Actuators, B Chem., vol 268, pp 188–194 [146] Y Ye et al., (2018), “Ultrasensitive electrochemical DNA sensor for virulence invA gene of Salmonella using silver nanoclusters as signal probe,” 131 Sensors Actuators, B Chem., vol 272, pp 53–59 [147] J Wang et al., (2018), “Rapid detection of food-borne Salmonella contamination using IMBs-qPCR method based on pagC gene,” Brazilian J Microbiol., vol 49, no 2, pp 320–328 [148] S Niyomdecha et al., (2018), “Phage-based capacitive biosensor for Salmonella detection,” Talanta, vol 188, pp 658–66 [149] I J Dinshaw, S Muniandy, S J Teh, F Ibrahim, B F Leo, and K L Thong, (2017), “Development of an aptasensor using reduced graphene oxide chitosan complex to detect Salmonella,” J Electroanal Chem., vol 806, no May, pp 88–96 [150] I Machado et al., (2019), “Rapid and specific detection of Salmonella infections using chemically modified nucleic acid probes,” Anal Chim Acta, vol 1054, pp 157–166 [151] Z Bagheryan, J B Raoof, M Golabi, A P F Turner, and V Beni, (2016), “Diazonium-based impedimetric aptasensor for the rapid label-free detection of Salmonella typhimurium in food sample,” Biosens Bioelectron., vol 80, pp 566–573 [152] M Freitas, S Viswanathan, H P A Nouws, M B P P Oliveira, and C Delerue-Matos, (2014), “Iron oxide/gold core/shell nanomagnetic probes and CdS biolabels for amplified electrochemical immunosensing of Salmonella typhimurium,” Biosens Bioelectron., vol 51, pp 195–20 [153] S Ghosh Dastider, S Barizuddin, N S Yuksek, M Dweik, and M F Almasri, (2015), “Efficient and rapid detection of salmonella using microfluidic impedance based sensing,” J Sensors, pp 125–132 [154] P A Quiton, B M Carreon, D M Dela Cruz-Papa, and J J Bergantin, (2018), “Bacteriophage-modified Graphene Oxide Screen-printed Electrodes for the Impedimetric Biosensing of Salmonella,” Sensors & Transducers, vol 28, no May, pp 38–42 [155] S Ranjbar, S Shahrokhian, and F Nurmohammadi, (2018), “Nanoporous gold as a suitable substrate for preparation of a new sensitive electrochemical aptasensor for detection of Salmonella typhimurium,” Sensors Actuators, B Chem., vol 255, pp 1536–154 132 [156] A Ravalli, G Pilon Dos Santos, M Ferroni, G Faglia, H Yamanaka, and G Marrazza, (2013), “New label free CA125 detection based on gold nanostructured screen-printed electrode,” Sensors Actuators, B Chem., vol 179, pp 194–200 [157] X Liu, Y Yao, Y Ying, and J Ping, (2019), “Recent advances in nanomaterial-enabled screen-printed electrochemical sensors for heavy metal detection,” TrAC - Trends Anal Chem., vol 115, pp 187–202 [158] M Tadros et al., (2013), “Epidemiology and Outcome of Pneumonia Caused by Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in Canadian Hospitals,” PLoS One, vol 8, no 9, pp 4–11 [159] K U Eckardt and T Feldkamp, (2019), “Intensive care medicine,” Nephrologe, vol 14, no 6, pp 412–419 [160] D T Thuc, T Q Huy, L H Hoang, T H Hoang, A T Le, and D D Anh, (2017), “Antibacterial Activity of Electrochemically Synthesized Colloidal Silver Nanoparticles Against Hospital-Acquired Infections,” J Electron Mater., vol 46, no 6, pp 3433–3439 [161] V Amendola and M Meneghetti, (2009), “Size evaluation of gold nanoparticles by UV-vis spectroscopy,” J Phys Chem C, vol 113, no 11, pp 4277–4285 [162] P Baptista et al., (2008), “Gold nanoparticles for the development of clinical diagnosis methods,” Anal Bioanal Chem., vol 391, no 3, pp 943–950 [163] J C Martínez, N A Chequer, J L González, and T Cordova, (2013), “Alternative Metodology for Gold Nanoparticles Diameter Characterization Using PCA Technique and UV-VIS Spectrophotometry,” Nanosci Nanotechnol., vol 2, no 6, pp 184–189 [164] C L Nehl and J H Hafner, (2008), “Shape-dependent plasmon resonances of gold nanoparticles,” J Mater Chem., vol 18, no 21, pp 2415–2419 [165] M Hu et al., (2006), “Gold nanostructures: Engineering their plasmonic properties for biomedical applications,” Chem Soc Rev., vol 35, no 11, pp 1084–1094 [166] M Sengani, A M Grumezescu, and V D Rajeswari, (2017), “Recent trends and methodologies in gold nanoparticle synthesis – A prospective review on 133 drug delivery aspect,” OpenNano, vol 2, no January, pp 37–46 [167] F Mafune, J Y Kohno, Y Takeda, and T Kondow, (2002), “Full physical preparation of size-selected gold nanoparticles in solution: Laser ablation and laser-induced size control,” J Phys Chem B, vol 106, no 31, pp 7575– 7577 [168] J Y Song, H K Jang, and B S Kim, (2009), “Biological synthesis of gold nanoparticles using Magnolia kobus and Diopyros kaki leaf extracts,” Process Biochem., vol 44, no 10, pp 1133–1138 [169] S A Dong and S P Zhou, (2007), “Photochemical synthesis of colloidal gold nanoparticles,” Mater Sci Eng B Solid-State Mater Adv Technol., vol 140, no 3, pp 153–159 [170] P Suchomel et al., (2018), “Simple size-controlled synthesis of Au nanoparticles and their size-dependent catalytic activity,” Sci Rep., vol 8, no 1, pp 1–11 [171] Y C Liu, L H Lin, and W H Chiu, (2004), “Size-controlled synthesis of gold nanoparticles from bulk gold substrates by sonoelectrochemical methods,” J Phys Chem B, vol 108, no 50, pp 19237–19240 [172] C.-J Huang, P.-H Chiu, Y.-H Wang, K.-L Chen, J.-J Linn, and C.-F Yang, (2006), “Electrochemically Controlling the Size of Gold Nanoparticles,” J Electrochem Soc., vol 153, no 12, p D193 [173] D T Thuc et al., (2016), “Green synthesis of colloidal silver nanoparticles through electrochemical method and their antibacterial activity,” Mater Lett., vol 181, pp 173–177 [174] A Kumar, A De, A Saxena, and S Mozumdar, (2014), “Environmentally benign synthesis of positively charged, ultra-low sized colloidal gold in universal solvent,” Adv Nat Sci Nanosci Nanotechnol., pp 2–5 [175] M Murawska, M Wiatr, P Nowakowski, K Szutkowski, A Skrzypczak, and M Kozak, (2013), “The structure and morphology of gold nanoparticles produced in cationic gemini surfactant systems,” Radiat Phys Chem., vol 93, pp 160–167 [176] F Compostella, O Pitirollo, A Silvestri, and L Polito, (2017), “Glyco-gold nanoparticles: Synthesis and applications,” Beilstein J Org Chem., vol 13, 134 pp 1008–1021 [177] T C Sơn, (2010), Thẩm Định Phương Pháp Trong Phân Tích Hóa Học Và Vi Sinh Vật NXB Khoa Học Kỹ Thuật, Hà Nội [178] S Hassani et al., (2018), “Novel label-free electrochemical aptasensor for determination of Diazinon using gold nanoparticles-modified screen-printed gold electrode,” Biosens Bioelectron., vol 120, pp 122–128 [179] M Khater, A de la Escosura-Muñiz, D Quesada-González, and A Merkoỗi, (2019), Electrochemical detection of plant virus using gold nanoparticlemodified electrodes,” Anal Chim Acta, vol 1046, pp 123–131 [180] D Xie et al., (2014), “Click chemistry-assisted self-assembly of DNA aptamer on gold nanoparticles-modified screen-printed carbon electrodes for labelfree electrochemical aptasensor,” Sensors Actuators, B Chem., vol 192, pp 558–564 [181] J Kampeera et al., (2019), “Point-of-care rapid detection of Vibrio parahaemolyticus in seafood using loop-mediated isothermal amplification and graphene-based screen-printed electrochemical sensor,” Biosens Bioelectron., vol 132, pp 271–278 [182] N X Viet, N X Hoan, and Y Takamura, (2019), “Development of highly sensitive electrochemical immunosensor based on single-walled carbon nanotube modified screen-printed carbon electrode,” Mater Chem Phys., vol 227, pp 123–129 [183] G A C Ribeiro, C Q da Rocha, W B Veloso, R N Fernandes, I S da Silva, and A A Tanaka, (2019), “Determination of the catechin contents of bioactive plant extracts using disposable screen-printed carbon electrodes in a batch injection analysis (BIA) system,” Microchem J., vol 146, no October 2018, pp 1249–1254 [184] A Veseli, F Mullallari, F Balidemaj, L Berisha, Ľ Švorc, and T Arbneshi, (2019), “Electrochemical determination of erythromycin in drinking water resources by surface modified screen-printed carbon electrodes,” Microchem J., vol 148, pp 412–418 [185] G Ibáđez-Redín et al., (2019), “Screen-printed interdigitated electrodes modified with nanostructured carbon nano-onion films for detecting the 135 cancer biomarker CA19-9,” Mater Sci Eng C, vol 99, pp 1502–1508 [186] G Martínez-Paredes, M B González-García, and A Costa-García, (2010), “Genosensor for detection of four pneumoniae bacteria using gold nanostructured screen-printed carbon electrodes as transducers,” Sensors Actuators, B Chem., vol 149, no 2, pp 329–335 [187] A Motaharian, M R M Hosseini, and K Naseri, (2019), “Determinaion of psychotropic drug chlorpromazine using screen printed carbon electrodes modified with novel MIP-MWCNTs nano-composite prepared by suspension polymerization method,” Sensors Actuators, B Chem., pp 356–362 [188] X Wang et al., (2019), “Gold nano-flowers (Au NFs) modified screen-printed carbon electrode electrochemical biosensor for label-free and quantitative detection of glycated hemoglobin,” Talanta, vol 201, no January, pp 119– 125 [189] I M Apetrei and C Apetrei, (2018), “A modified nanostructured graphenegold nanoparticle carbon screen-printed electrode for the sensitive voltammetric detection of rutin,” Meas J Int Meas Confed., vol 114, no May 2017, pp 37–43 [190] W Dou, W Tang, and G Zhao, (2013), “A disposable electrochemical immunosensor arrays using 4-channel screen-printed carbon electrode for simultaneous detection of Escherichia coli O157:H7 and Enterobacter sakazakii,” Electrochim Acta, vol 97, pp 79–85 [191] D Jiang et al., (2018), “A novel screen-printed mast cell-based electrochemical sensor for detecting spoilage bacterial quorum signaling molecules (N-acyl-homoserine-lactones) in freshwater fish,” Biosens Bioelectron., vol 102, pp 396–402 [192] M Khairy, H A Ayoub, and C E Banks, (2018), “Non-enzymatic electrochemical platform for parathion pesticide sensing based on nanometer-sized nickel oxide modified screen-printed electrodes,” Food Chem., vol 255, no June 2017, pp 104–111, doi: 10.1016/j.foodchem.2018.02.004 [193] F Li, X Wang, X Sun, and Y Guo, (2018), “Multiplex electrochemical aptasensor for detecting multiple antibiotics residues based on carbon fiber 136 and mesoporous carbon-gold nanoparticles,” Sensors Actuators, B Chem., vol 265, pp 217–226 [194] J Liu, X Yuan, Q Gao, H Qi, and C Zhang, (2012), “Ultrasensitive DNA detection based on coulometric measurement of enzymatic silver deposition on gold nanoparticle-modified screen-printed carbon electrode,” Sensors Actuators, B Chem., vol 162, no 1, pp 384–390 [195] M Sayhi et al., (2018), “Electrochemical detection of influenza virus H9N2 based on both immunomagnetic extraction and gold catalysis using an immobilization-free screen printed carbon microelectrode,” Biosens Bioelectron., vol 107, pp 170–177, doi: 10.1016/j.bios.2018.02.018 [196] M Singh, N Jaiswal, I Tiwari, C W Foster, and C E Banks, (2018), “A reduced graphene oxide-cyclodextrin-platinum nanocomposite modified screen printed electrode for the detection of cysteine,” J Electroanal Chem., vol 829, pp 230–240 [197] J Raveendran, J Stanley, and T G Satheesh Babu, (2018), “Voltammetric determination of bilirubin on disposable screen printed carbon electrode,” J Electroanal Chem., vol 818, no 2017, pp 124–130 [198] A C Ward, A J Hannah, S L Kendrick, N P Tucker, G MacGregor, and P Connolly, (2018), “Identification and characterisation of Staphylococcus aureus on low cost screen printed carbon electrodes using impedance spectroscopy,” Biosens Bioelectron., vol 110, pp 65–70 [199] F Y Yeh, T Y Liu, I H Tseng, C W Yang, L C Lu, and C S Lin, (2014), “Gold nanoparticles conjugates-amplified aptamer immunosensing screen-printed carbon electrode strips for thrombin detection,” Biosens Bioelectron., vol 61, pp 336–343 [200] C Zhang et al., (2019), “A disposable molecularly imprinted sensor based on Graphe@AuNPs modified screen-printed electrode for highly selective and sensitive detection of cyhexatin in pear samples,” Sensors Actuators, B Chem., pp 13–22 [201] S Z Oo et al., (2016), “A nanoporous gold membrane for sensing applications,” Sens Bio-Sensing Res., vol 7, pp 133–140 [202] A Sivanesean and S A John, (2009), Gold Nanoparticles Modified 137 Electrodes for Biosensors, no January 2009 [203] X Cao, Y Ye, and S Liu, (2011), “Gold nanoparticle-based signal amplification for biosensing,” Anal Biochem., vol 417, no 1, pp 1–16 [204] M Vidotti, R F Carvalhal, R K Mendes, D C M Ferreira, and L T Kubota, (2011), “Biosensors based on gold nanostructures,” J Braz Chem Soc., vol 22, no 1, pp 3–20 [205] T Hezard, K Fajerwerg, D Evrard, V Collire, P Behra, and P Gros, (2012), “Gold nanoparticles electrodeposited on glassy carbon using cyclic voltammetry: Application to Hg(II) trace analysis,” J Electroanal Chem., vol 664, pp 46–52 [206] R Henriquez et al., (2019), “Effect of a metallic surfactant on the electrical percolation of gold films,” Appl Surf Sci., vol 489, no May, pp 403–408 [207] N Tavakkoli, N Soltani, M Sadeghi, and H Salavati, (2019), “Electrochemical determination of methimazole using nanoporous gold film electrode modified with MoO2 thin film,” Microchem J., vol 150, no August, p 104153 [208] J Sánchez, E Castillo, P Corredor, and J Ágreda, (2011), “Determination of mercury by anodic stripping voltammetry in aqua regia extracts,” Port Electrochim Acta, vol 29, no 3, pp 197–210 [209] R G C & C E Banks, (2010), Understanding voltammetry (2nd edition) Imperial College Press [210] X Jia, S Dong, and E Wang, (2016), “Engineering the bioelectrochemical interface using functional nanomaterials and microchip technique toward sensitive and portable electrochemical biosensors,” Biosens Bioelectron., vol 76, pp 80–90 [211] Y Li, Y Chen, H Yu, L Tian, and Z Wang, (2018), “Portable and smart devices for monitoring heavy metal ions integrated with nanomaterials,” TrAC - Trends Anal Chem., vol 98, pp 190–200 [212] Y FAN et al., (2016), “Development of Portable Device for Point-of-Care Testing of Tumor Marker,” Chinese J Anal Chem., vol 44, no 7, pp 1148– 1154 138 [213] Y Liu, P Singh, and A Mustapha, (2018), “Multiplex high resolution meltcurve real-time PCR assay for reliable detection of Salmonella,” Food Control, vol 91, pp 225–230 [214] L Lin, C Tsai, M Hung, Y Fang, and Q Ling, (2011), “Rectal Swab Sampling Followed by an Enrichment Culture-based Real-time PCR Assay to Detect Salmonella Enterocolitis in Children - Lin - Clinical Microbiology and Infection - Wiley Online Library,” pp 1469–0691 139 ...BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA HÀ NỘI - - Vũ Quang Khuê NGHIÊN CỨU CHẾ TẠO BỘ CẢM BIẾN ĐIỆN HÓA TRÊN CƠ SỞ CÁC VẬT LIỆU NANO VÀNG, BẠC -OXIDE GRAPHENE KHỬ ĐỂ PHÁT HIỆN MỘT... phát từ thực tiễn, luận án nghiên cứu với tiêu đề: ? ?Nghiên cứu chế tạo cảm biến sinh học điện hóa sở vật liệu nano vàng, bạc - oxide graphene khử để phát số vi khuẩn gây bệnh? ?? đề xuất cho luận án... Chế tạo cảm biến điện hóa sở điện cực in lưới cacbon biến tính với bạc- oxide graphene khử; (2) Chế tạo cảm biến sinh học điện hóa sở điện cực in lưới cacbon biến tính hạt nano vàng; (3) Chế tạo