ĐẠI HỌC THÁI NGUYÊN TRƯỜNG ĐẠI HỌC SƯ PHẠM NGUYỄN THỊ PHƯƠNG THẢO NGHIÊN CỨU TẠO DÒNG THUỐC LÁ (NICOTIANA TABACUM L.) MANG GEN GmDREB2 PHẬN LẬP TỪ CÂY ĐẬU TƯƠNG Chuyên ngành: Di truyền học Mã số: 60.42.01.21 LUẬN VĂN THẠC SĨ SINH HỌC Người hướng dẫn khoa học: TS.Vũ Thị Thu Thuỷ Thái Nguyên, năm 2015 LỜI CAM ĐOAN Tôi xin cam đoan luận văn công trình nghiên cứu tơi hướng dẫn TS Vũ Thị Thu Thủy, giúp đỡ thầy cô giáo, cán Bộ môn Di truyền & Sinh học đại Khoa Sinh học– Trường Đại học Sư phạm- Đại học Thái Nguyên Các số liệu nêu luận văn trung thực Các kết chưa cơng bố cơng trình khác Tơi xin hồn tồn chịu trách nhiệm số liệu luận án Thái Nguyên, tháng 11 năm 2015 Tác giả Nguyễn Thị Phương Thảo XÁC NHẬN XÁC NHẬN CỦA KHOA CHUYÊN MÔN CỦA NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC TS Vũ Thị Thu Thủy Số hóa Trung tâm Học liệu – ĐiHTN http://www.lrc.tnu.edu.vn LỜI CẢM ƠN Tơi xin bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc tới TS Vũ Thị Thu Thủy định hướng khoa học, tận tình hướng dẫn, giúp đỡ tạo điều kiện tốt suốt q trình tơi tiến hành nghiên cứu hồn thành luận văn Tơi xin bày tỏ lòng biết ơn tới GS.TS Chu Hồng Mậu tận tình hướng dẫn, bảo tạo điều kiện để tơi hồn thành Bản luận văn thạc sĩ Tôi xin chân thành cảm ơn thầy cô, cán Bộ môn Di truyền & Sinh học đại, khoa Sinh học, trường Đại học Sư phạm - Đại học Thái Nguyên; xin cảm ơn chị Trần Thị Hồng - KTV phòng Cơng nghệ tế bào thực vật, tạo điều kiện giúp đỡ q trình học tập, thực thí nghiệm đề tài Tôi xin bày tỏ lời cảm ơn tới bạn bè tồn thể gia đình động viên, khuyến khích, giúp đỡ tơi, ln quan tâm chỗ dựa cho tơi suốt q trình học tập hoàn thành luận văn Thái Nguyên, tháng 11 năm 2015 Tác giả Nguyễn Thị Phương Thảo Số hóa Trung tâm Học liệu – ĐiiHTN http://www.lrc.tnu.edu.vn MỤC LỤC Trang Lời cam đoan i Lời cảm ơn ii Mục lục iii Danh mục chữ viết tắt iv Danh mục bảng v Danh mục hình vi MỞ ĐẦU Chương TỔNG QUAN TÀI LIỆU 1.1 Cây thuốc hệ thống tái sinh thuốc 1.1.1 Cây thuốc 1.1.2 Hệ thống tái sinh chuyển gen thuốc 1.2 Tính chịu hạn gen liên quan đến tính chịu hạn thực vật 1.2.1 Hạn tác hại hạn lên thực vật 1.2.2 Đặc tính chịu hạn thực vật 1.2.3 Gen liên quan đến tính chịu hạn 10 1.2.4 Gen DREB gen DREB2 12 1.3 Phương pháp tạo trồng chuyển gen 18 Chương VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 26 2.1 Vât liêu hoá chất va thiết bi 26 2.1.1 Vật liệu 26 2.1.2 Hóa chất 26 2.1.3 Thiết bị 26 2.1.4 Đia điêm nghiên cưu 26 2.2 Phương pháp nghiên cứu 27 2.2.1 Phương pháp tạo nguyên liệu biến nạp 27 Số hóa Trung tâm Học liệu – ĐiiHi TN http://www.lrc.tnu.edu.vn 2.2.2 Phương pháp chuyển gen vào thuốc thơng qua A tumefaciens 27 2.2.3 Phân tích có mặt cấu trúc mang gen GmDREB2 phương pháp PCR 29 Chương KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN 32 3.1 Kết tạo nguyên liệu biến nạp 32 3.2 Kết qua chuyên vector mang cấu trúc GmDREB2 vào thuốc la 33 3.2.1 Đồng nuôi cấy với dung dịch A tumefaciens cảm ứng tạo cum chồi 34 3.2.2 Tạo rễ chuyển môi trường tự nhiên 37 3.3 Kết kiểm tra có mặt gen chuyển dòng thuốc chuyển gen kỹ thuật PCR 39 KÊT LUÂN VA ĐÊ NGHI 42 TÀI LIỆU THAM KHẢO 43 PHỤ LỤC Số hóa Trung tâm Học liệu – ĐivHT N http://www.lrc.tnu.edu.vn DANH MỤC CHỮ CÁI VIẾT TẮT ABA Abscisic acid AS Acetosyringone A.tumefacines Agrobacterium tumefacines BAP 6-Benzyl Amino Purine bp Base pair (cặp base) DNA Deoxyribonucleic Acid dNTP Deoxynucleic triphosphate DREB Dehydration Responsive Binding protein ĐC Đối chứng EDTA Ethylene Diamine Tetra-acetate Acid IAA Indoleacetic acid IBA Indole-3 butyric acid LB Luira and Bertani LEA Late Embryogenesis Abundant MS Môi trường theo Murashige Skoog (1962) PCR Polymerase chain reaction RM Môi trường rễ TAE Tris Acetate EDTA Taq Thermus aquaticus Ti-plasmid Plasmid tạo khối u Vir Virulence region Số hóa Trung tâm Học liệu – ĐivHTN http://www.lrc.tnu.edu.vn DANH MỤC BẢNG Trang Bảng 2.1 Thành phần dung dịch đệm chiết DNA tổng số 29 Bang 2.2 Trinh tư nucleotide cua căp mồi PCR khuếch đai đoan GmDREB2 30 Bảng 2.3 Thành phần phản ứng PCR với cặp mồi đặc hiệu nhân gen GmDREB2 31 Bảng 2.4 Chu trình nhiệt cho phản ứng nhân gen GmDREB2 31 Bảng 3.1 Kết cảm ứng chồi từ mảnh thuốc 36 Bang 3.2 Kết qua tạo rễ tái sinh thuốc thí nghiệm đối chứng 38 Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ5HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn DANH MỤC HÌNH Trang Hình 1.1 Cây thuốc giai đoạn trưởng thành giai đoạn hoa Hình 1.2 Cấu trúc Ti - Plasmid 22 Hình 1.3 Mơ hình chuyển gen gián tiếp nhờ A tumefaciens 23 Hình 3.1 Tạo nguyên liệu biến nạp 32 Hình 3.2 Vùng T-DNA vector pBI121 - GmDREB2 33 Hinh 3.3 Hình ảnh nhiễm khuẩn mẫu đồng nuôi cấy 35 Hình 3.5 Hình ảnh tạo rễ môi trường kháng sinh chọn lọc 38 Hinh 3.6 Cac dong thuốc la chuyển gen thế T0 trồng châu nha lươi 39 Hình 3.7 Kết qua điện di kiêm tra san phâm PCR nhân đoan GmDREB2 tư 17 dong thuốc chuyên gen 40 MỞ ĐẦU Lý chọn đề tài Một tượng thay đổi môi trường ảnh hưởng tới sinh trưởng phát triển thực vật tình trạng hạn Hạn hán có ảnh hưởng xấu mức độ khác suốt trình hay giai đoạn sống thể thực vật dẫn đến làm giảm suất trồng, chậm phát triển gây chết Hiện giới diện tích đất nơng nghiệp bị hạn hán ngày tăng Ở Việt Nam tình trạng hạn hán trở nên báo động năm 2015, diện tích đất nơng nghiệp khơng có nước để sản xuất tăng cao Khả chịu hạn thực vật tính trạng nhiều gen quy định Hiện nay, người ta chưa tìm gen cụ thể thực định tính chịu hạn, mà xác định gen liên quan đến tính chịu hạn thực vật Nhiều trình tự gen liên quan đến tính chịu hạn đậu tương công bố Ngân hàng gen Quốc tế, có gen DREB DREB (Dehydration Responsive Element Binding) họ gen sản xuất protein kích hoạt nhóm gen liên quan đến tính chịu hạn thực vật Việc nghiên cứu gen DREB2 liên quan đến tính chịu hạn cho thấy nhóm gen đa dạng cấu trúc, chức tác giả khuyến cáo cần tiếp tục mở rộng nghiên cứu Hiện nay, nhờ tiến kỹ thuật di truyền mà người ta tạo giống trồng có khả chịu hạn cách lai giống, đột biến thực nghiệm, công nghệ tế bào, chuyển gen Chọn tạo giống trồng thực nhiều phương pháp khác chọn dòng biến dị soma, lai giống, gây đột biến thực nghiệm, sử dụng cơng nghệ tế bào chuyển gen Đã có nhiều giống trồng chọn tạo giống lúa chịu hạn tác giả Đinh Thị Phòng [17], dòng lúa chịu nóng Nguyễn Thị Tâm [19] Các dòng lạc chịu hạn tạo cách gây đột biến Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ1HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn thực nghiệm- tác giả Vũ Thị Thu Thủy [23] Chuyển gen kỹ thuật cho phép đưa hay số gen định vào hệ gen chủ quan tâm để tạo trồng biến đổi gen nhằm cải thiện số đặc tính hay tính trạng theo hướng có lợi cho người Chuyển gen hướng nghiên cứu có nhiều triển vọng, tiến hành thực nghiệm nhiều giống trồng như: cà chua, lúa, ngô, đậu tương áp dụng nhiều nước giới Trong chuyển gen gián tiếp thơng qua vi khuẩn Agrobacterium tumefacines (A.tumefacines) tỏ ưu cá kỹ thuật chuyển gen khác tốn kém, quy trình đơn giản, nhanh chóng, dễ áp dụng nhiều đối tượng trồng Do hệ thống tái sinh thuốc tương đối đơn giản thời gian phân hóa từ mơ thành hồn chỉnh ngắn nên nghiên cứu chuyển gen nhà khoa học thường chọn thuốc làm mơ hình Xuất phát từ sở lựa chọn tiến hành nghiên cứu đề tài: “Nghiên cứu tạo dòng thuốc (Nicotiana tabacum L.) mang gen GmDREB2 phận lập từ đậu tương” Mục tiêu nghiên cứu Tạo dòng thuốc chuyển gen mang gen GmDREB2 phân lập từ đậu tương Nội dung nghiên cứu (1) Nghiên cứu tạo nguyên liệu biến nạp từ thuốc giống K326 (2) Nghiên cứu lây nhiễm A tumefaciens mang vector chuyển gen vào mảnh thuốc Tái sinh in vitro, chọn lọc tạo dòng thuốc chuyển gen (3) Phân tích có mặt gen chuyển dòng chuyển gen hệ T0 kỹ thuật PCR Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ2HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn Gen ngoại lai biến nạp vào tế bào tồn tế bào chủ trạng thái: (1) Tạm thời dạng DNA tự do; (2) tồn lâu dài dạng thể plasmid độc lập tự nhân; (3) tồn ổn định đoạn DNA hệ gen tế bào chủ nhân lên theo dạng tương hợp hay không tương hợp Kết dương tính với PCR bước đầu giúp đầu kiểm tra xem gen chuyển vào hay khơng Tuy nhiên, PCR dương tính chưa thể khẳng định xem gen có hoạt động tồn qua nhiều hệ hay không [21] Chinh vi vây đa có nhiều cách giải thích tồn DNA mẫu phân tích, đo la: (i) Vi khuẩn A tumefaciens mang gen tồn khối mô hay gian bào mẫu phân tích Hiện tượng xuất nhiều đối tượng Nếu mẫu phân tích thực vật qua nhân giống hữu tính, tức qua hệ T1, T2 dạng hạt, thi kha hoàn toàn bi loại trừ; (ii) Gen chuyển tồn tự tế bào chất, biến qua sinh sản hữu tính; (iii) Gen chuyển khơng hoạt động, tức khơng biểu thành protein có chức sinh học [21] Xuất phat tư kha trên, đê khăng đinh gen chuyên tồn tai, di truyền va biêu cac thế cần phai tiếp tuc phân tich co măt cua cấu truc GmDREB2 cac hệ T1, T2 , đanh giá mưc đô biêu va ơn đinh tính khang virus thế đo Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ41HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn KÊT LUÂN VA ĐÊ NGHỊ Kêt luân 1.1 Giống thuốc K326 nuôi cấy in vitro tạo đủ nguyên liệu, có chất lượng tốt phục vụ thí nghiệm biến nạp vector pBI121- GmDREB2 1.2 Cấu truc pBI121- GmDREB2 chuyển công vao mô la thuốc la giống K326 thông qua lây nhiêm A tumefaciens 1.3 Phân tích dong thuốc la chuyên gen đa xac đinh đươc 11/17 dong thuốc chuyên gen thế hệ T0 dương tinh với phan ưng PCR Đê nghi Tiếp tục theo doi, phân tich va đanh giá khả chịu hạn cua cac dong thuốc chuyên gen cac sau Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ42HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn TÀI LIỆU THAM KHẢO Tiếng Việt Lê Trần Bình, Hồ Hữu Nhị, Lê Thị Muội (1997), Cơng nghệ sinh học thực vật cải tiến giống trồng, Nxb Nông nghiệp, Hà Nội, tr30-32 Lê Trần Bình, Lê Thị Muội (1998), Phân lập gen chọn dòng chống chịu ngoại cảnh bất lợi lúa, Nxb Đại học Quốc gia, Hà Nội Nguyễn Liên Chi, Nguyễn Hữu Hồ, Nguyễn Văn Uyển (1989), "Chyển gen kháng kanamycine vào mô thuốc (N.tabacum) mô cà úc vi khuẩn A.tumefacines", Tạp chí Di truyền 1/1989 Nguyễn Hữu Cường, Nguyễn Thị Kim Anh, Đinh Thị Phòng, Lê Thị Muội, Lê Trần Bình(2003), Mối tương quan hàm lượng proline tính chống chịu lúa , Tạp chí Cơng nghệ sinh học 1(1), tr 85-95 Trần Kim Đồng, Nguyễn Quang Phổ, Lê Thị Hoa (1991), Giáo trình sinh lý trồng, Nxb Giáo dục Nguyễn Thu Hiền (2014), Nghiên cứu chuyển gen mã hóa protein bề mặt virus H5N1 vào đậu tương phục vụ sản xuất vaccine thực vật", Luận án tiến sĩ sinh học- Đại học Thái Nguyên Nguyễn Huy Hoàng, Vũ Thị Như Trang (2012), Thiết kế vector mang gen HA1 virus H5N1 sử dụng chuyển gen thơng qua vi khuẩn A.rhizogene Tạp chí khoa học công nghệ, Đại học Thái Nguyên, Tập 89, tr 147- 151 Nguyễn Thị Thúy Hường (2011), Phân lập tạo đột biến điểm gen P5CS liên quan đến tính chịu hạn thực nghiệm chuyển vào đậu tương Việt Nam, Luận án tiến sĩ sinh học- Đại học Thái Nguyên Khuất Hữu Khanh (2006), Kỹ thuật gen nguyên lý ứng dụng Nxb Khoa học kỹ thuật, Hà Nội, tr 56 - 57 Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ43HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn 10 Ngô Thị Liêm, Chu Hoàng Mậu (2006), Đặc điểm phản ứng giống lạc điều kiện hạn sinh lý, Tạp chí Nông nghiệp phát triển nông thôn, (84), tr 82 - 87 11 Trần Thị Phương Liên (1999), Nghiên cứu đặc tính hóa sinh sinh học phân tử số giống đậu tương có khả chịu nóng, chịu hạn Việt Nam, Luận án Tiến sĩ Sinh học, Hà Nội, tr 18 - 36 12 Trần Thị Phương Liên (2010), Protein tính chống chịu thực vật, NXB Khoa học Tự nhiên Công nghệ, Hà Nội 13 Trần Thị Phương Liên, Nông Văn Hải (2005), Protein dự trữ protease hạt trồng, Tạp chí Công nghệ sinh học, 3(4), tr 37 - 45 14 Trần Thị Phương Liên, Lê Thị Muội (2004), Nghiên cứu thành phần đường tan chọn giống đậu tương Báo cáo khoa học - Những vấn đề nghiên cứu khoa học sống, Nxb Khoa học kỹ thuật, tr 473, 475 15 Chu Hoàng Mậu, Nguyễn Thị Vân Anh (2005), Khảo sát chất lượng hạt khả chịu hạn số giống lúa cạn địa phương vùng núi phía Bắc , Tạp chí Nơng nghiệp phát triển nơng thơn, (17) tr 19 - 23 16 Nguyễn Thị Thu Ngà (2014), Nghiên cứu phân lập chuyển gen NAC2 liên quan đến tính chịu hạn lạc (Arachis hypogaea L), Luận án tiến sĩ sinh học, Đại học Thái Nguyên 17 Đinh Thị Phòng (2001), Nghiên cứu khả chịu hạn chọn dòng chịu hạn lúa cơng nghệ tế bào thực vật, Luận án tiến sĩ sinh học, Viện cơng nghệ sinh học, Hà Nội 18 Lò Thanh Sơn (2015), Nghiên cứu đặc điểm chuyển gen GmEXP1 liên quan đến phát triển rễ đậu tương, Luận án tiến sĩ sinh học, Đại học Thái Nguyên 19 Nguyễn Thị Tâm (2004), Nghiên cứu khả chịu nóng chọn dòng chịu nóng lúa công nghệ tế bào thực vật, Luận án tiến sĩ sinh học Viện công nghệ sinh học, Hà Nội Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ44HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn 20 Nguyễn Quang Thạch (chủ biên), Nguyễn Thị Lý Anh, Nguyễn Thị Phương Thảo (2005), Giáo trình cơng nghệ sinh học nông nghiệp, Nxb Nông nghiệp - Hà Nội 21 Nguyễn Đức Thành (2003), Chuyển gen thực vật, Nxb Khoa học kỹ thuật, tr 28 - 29 22 Bùi Thị Thu Thủy, Nguyễn Thị Tâm, Nguyễn Mạnh Quỳnh (2006), Ảnh hưởng hạn sinh lý đến số tiêu hóa sinh hạt nảy mầm số giống lúa, Tạp chí Nơng nghiệp phát triển nơng thôn, 12(2), tr 29 - 33 23 Vũ Thị Thu Thủy (2011), Tạo dòng chịu hạn phân lập gen cystatin liên quan đến tính chịu hạn lạc (Arachis hypogaea L.), Luận án tiến sĩ sinh học- Đại học Thái Ngun 24 Phan Hữu Tơn (2004), Giáo trình Công nghệ sinh học chọn tạo giống trồng, Nxb Nông nghiệp, Hà Nội 25 Phạm Thị Vân, Nguyễn Minh Hùng, Hà Viết Cường, Lê Văn Sơn, Lê Trần Bình, Chu Hồng Hà (2009), Tạo thuốc kháng virus TMV kĩ thuật RNAi, Hội thảo Quốc gia Bệnh hại Thực vật Việt Nam, 25 -26/7 Viện Nghiên cứu Bông phát triển NN, Nha Hồ - Ninh Thuận, tr 32-40 26 Phạm Thị Vân, Nguyễn Văn Bắc, Lê Văn Sơn, Chu Hồng Hà, Lê Trần Bình (2008), Tạo thuốc kháng bệnh virus khảm dưa chuột kỹ thuật RNAi, Tạp chí Cơng nghệ sinh học 6(4A), 679- 687 27 Vũ Văn Vụ (1999), Sinh lý thực vật ứng dụng, Nxb Đại học quốc gia Hà Nội (148 trang) 28 Vũ Văn Vụ , Vũ Thanh Tâm, Hoàng Minh Tấn (1997), Sinh lý học thực vật, Nxb Giáo dục, Hà Nội, tr 125- 224 Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ45HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn Tiếng Anh 29 Abe H., Shinozaki Y., Urao T., Hosokawa D., Shinozaki K (2008), "Role of Arabidopsis MYC and MYB Homologs in Drought- and Abscisic Acid- Regulated Gene Expression", The Plant cell, 9(10), pp 1859-1868 30 Akasaka Y., Hiroyuki.,Masashiro M (2000), Improved plant regeneration from cultured leaf segments in peanut ( Arachis hypogaea L.) by limited exposure to thidiazuron , Plant Sci, 156, pp: 169-175 31 Banerjee A.K., Part S., Hannapel D.J (2006), Eficinent prodution of transgenic potato ( S.tuberosum L.ssp.andigena) plants via Agrobacterium tumefacines - mediated transformation, Plant Science, 170, pp.732 - 738 32 Bray E.A (1993), Molecular responses to water deficit, Plant Physital, 103: 1035 - 1040 33 Cao Xin-You, You-Zhi M., (2008), Isolation and identification of a GmGβ1 Interacting Protein with GmDREB5 Protein in Soybean (Glycine max), Acta agronomica sinica, 34 (10): 1688-1695 34 Cortés A.J., This D, Chararro C., Madrinan S, Blair MW (2012), Nucleotide ediversity patterns at the drought - related DREB2 encoding genes in wild and cultivated common bean ( Phaseolus vulgaric L.), Thear Appl Genet, 125(5): 1069- 85 35 Charlson D.V., Korth K.L., Purcell L.C., (2009), Allantoate amidohydrolase transcript expression is independent of drought tolerance in soybean, J Exp Bot., 60: 847-851 36 Chen M., Wang Q.Y., Xu Z.S., Li L.C., Ye X.G., Xia L.Q, Ma Y.Z., (2007), GmDREB2, a soybean DRE – binding transcription factor, conferred droungt and high – salt tolerance in transgenic plants, Biochem Biophys Res Commun, 353(2): 299 – 305 Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ46HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn 37 Chen Y., Chen P., and de los Reyes B.G (2004), Analysis of the expression of DREB1 gene orthogogs in cultivated and wild specises of soybean, NCBI, GenBank, Accession AY802779 38 Clarson D.V., Hu X., Okimoto B., Purcell L.C., (2009), Glycine max cultivar Jackson drought responsive element binding, NCBI, accession FJ965342 39 Diaz-Martin J., Almoguera C., Prieto-Dapena P., Espinosa J.M., Jordano J., (2005), Functional interaction between two transcription factors involved in the developmental regulation of a small Heat stress Protein promoter, Plant Physiol, 139(3): 1483-1494 40 Dramé K.N., Clavel D., Repellin A., Passaquet C., Zuily - Fodil Y (2007), Water deficicit induces variation in expression of stress - responsive genes in two peanut ( Arachis hypogaea L.) cultivars with diffierent to lerance to drough, Plant Physiol Biochem 45 (3-4): 236 - 243 41 Dubouzet J.G., Sakuma Y., Ito Y., Kasuga M., Dubouzet E.G., Miura S., Seki M., Shinozaki K., Yamaguchi-Shinozaki K., (2003), OsDREB genes in rice, Oryza sativa L., encode transcription activators that function in drought-, high-salt- and cold-responsive gene expression, Plant J., 33(4):751-63 42 Ernst H.A (2004), "Structure of the conserved domain of ANAC, a member of the NAC family of transcription factors", EMBO Rep., 5, pp 43 FAO/WHO (1990) Expert consultation on protein quality evaluation Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome 44 Fujita Y., Fujita M., Satoh R., Maruyama K., Mohammad M., Seki M., Shinozaki K., Shinozaki K (2005), " AREB1 Is a Transcription Activator of Novel ABRE-Dependent ABA Signaling That Enhances Drought Stress Tolerance in Arabidopsis", The Plant Cell, 17, pp 34703488 Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ47HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn 45 Goyal K., Walton L.J., Tunnacliffe A (2005), LEA proteins prevent pritein aggregation due to water strees, Biochem Journal 388(1): 151 - 157 46 Guerrini G.I, Trihueiro R.M., Leite R.M., Wilcken C.F., Velini E.D., Mori E.S., Furtado E.L., Marino C.L., Maia I.G (2005), Eucalyptus EST involved in the production of 9-cis epoxycarotenoid dioxygenase, a regulatory enzyme of abscisic acid production, Genet Mol Biol, 28 (3): 640-643 47 Hanif M.(2004), Chracterization of small GTPase Cdc42 from the ectomycorrhizal fungus Suillus bovinus and Agrobacterium tumefaciensmediated transformation of fungi, University of Helsinki 48 Hong Y., Zhing S., Wang X., (2008), Dual functions of phospholipase Dα1 in plant response to drought, Mol Plant 1, 262- 269 49 Ishida T., Aida M., Takada M., (2000), In-volvement of CUP-SHAPED COTYLEDON genes om gy-noecium and ovule development in Aradopsis thaliana, Plant Cell Physiol, 41: 60-67 50 Javad K.A., Sasan M., Hassan M., (2009), Isolation and Characterization of Partial DREB Gene from four Iranian, Triticum aestivum Cultivars World Journal of Agricultural Sciences, 5(5): 561-566 51 Khalafalla, M.M., S.M.Rahman, H.A.El - Shemy, Y.Nakamoto, K.Wakasa and M.Ishimoto (2005) Optimization of praticle bombardment conditions by monitoring of transient sGFP(S65T) expression in transformed soybean Breed Sci 55: pp 257 - 263 52 Li X.P., Tian A.G., Luo G.Z., Gong Z.Z., Zhang J.S., Chen S.Y., (2005), Soybean DRE-binding transcription factors that are responsive to abiotic stresses, Theor Appl Genet, 110(8): 1355-1362 53 Liu W (2010), Clone of resvertrol synthesis gene from peanut, Accession: FM955403, FM955401, FM955398 54 Liu L.Q., Zhu K., Yang Y.F., Wu J., Yu D.Y., Chen F.D., (2007), Molecular cloning, expressional profiling and trans-activation property Số hóa Trung tâm Học liệu – http://www.lrc.tnu.edu.vn Đ48HTN studies of a DREB2-like gene from Chrysanthemum (Dendranthema vestitum), Chrysanthemum vestitum DREB2-like protein (DREB2A) mRNA, complete cds, NCBI, Accession EF633987 55 Liu M., Wang N., Ma Y.Z., Cheng X.G., Glycine max dehydration responsive element-binding protein 3(DREB3) mRNA, complete cds, ACCESSION DQ055133 56 Liu Q., Sakuma Y., Abe H., Kasuga M., Miura S., Yamaguchi- Shinozai K., Shinozaki K., (1998), Two transcription factors, DREB1 and DREB2, with an EREBP/AP2 DNA binding domain, separate two cellular singnal transduction pathways in drought and low temperature responsive gene expression, respectively, in Arabidopsis, Plant Cell, 10: 1391-1406 57 Liu W., Feng F., (2008), Cloning and functional analysis of DREB transcription factors in Nictotiana tabacum, Nicotiana tabacum DREB4 mRNA, complete cds, NCBI, Accession EU727158 58 Long S DNA Rebagliati M (2002), Sensitive two - color whole - mount in situ hybridizations using digoxygenin - DNA dinitrophenol - labeled RNA probes Bio Techniques 32: pp 494 - 500 59 Lopez S.J., Kumar R.R., Pius P.K., Muraleedharan N (2004), Agrobacterium tumefaciens - mediated genetic transformation in Tea ( Camellia sinensis [L] O Kuntze) Plant molecular biology reporter 22: pp 201a- 201j 60 Mattews P.R., Wang M.B., Waterhouse P.M., Thornton S., Fieg S.J., Gubler F., Jacobsen J.V (2001), Marker gene elimination from transgenic barley, using co- transformation with adjacent twin T- DNAs on stDNAard Agrobacterium transformation vector Mol Breed 7: pp 195- 202 Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ49HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn 61 Maughan, P.J., R.Philip, M-J Cho, J.M Widholm and L.O Vodkin (1999) Biolistic transformation expression, and inheritance of bovene ß-casein in soybean ( Glycine max In Vitro Cell Biol Plant 35: pp.344 - 349 62 Murashige T and Skoog F (1962), Arivised medium for rapid growth and bioassays with tobaceo tissiee- culture, Physiology Planta, 15: 473 - 497 63 Nakashima K., Shinwari ZK., Skuma Y., Seki M, Miura S, Shinoraki K., Yamaguchi - Shinozaki K., (2000), Organization and expression of two Arabidopsis DREB2 genes encoding DRE- binding proteins involved in dehydration and high - salinity - responsive gene expression, Biological Resources Division, Japan International Research Center for Agricultural Sciences, Tsukaba, Ibaraki 64 Perlak, F.J., Stone, T.B., Muskopf, Y.N., Petersen, L.J.,Parker, G.B., McPherson, S.A., Wyman, J., Love, S., Reed, G., Biever, D and Fischhoff, D.A (1993) Genetically improved potatoes: protection from damage by Colorado potato beetles Plant Molecular Biology 22:313321 65 Nguyễn V.T.T., Chu H.M., Phạm M.D., Hoàng M.V., (2011), Glycine max dreb1 gene for drought responsive element binding protein 1, cultivar Cucvang-YenSon, NCBI, Accession HE647689 66 Qin F., Kakimoto M., Sakuma Y., Maruyama K., Osakabe Y., Tran L.S., Shinozaki K., Yamaguchi-Shinozaki K., (2007), Regulation and functional analysis of ZmDREB2A in response to drought and heat stresses in Zea mays L., Plant J 67 Sakuma Y., Maruyama K., Osakabe Y., Qin F., Seki M., Shinozaki K., Yamaguchi S.K (2006), Funotion analysis of an Arabidopsis trancription factor, DREB2a, involved in drought responsive gene expession, The Plant Cell 18: 1292-1309 Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ50HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn 68 Sambrook J., Fritsch E F., Maniatis T., (2011), Molecular cloning, A Laboraory Manual, New York: Cold Spring Harbor Laboratory press 69 Tsui-Hung P., Guihua S., Hon-Ming L., (2008), Salt Tolerance in Soybean, Journal of Intrgrative Plant Biology, 50(10): 1196-1212 70 Sato, S., C Newell, K.Kolacz, L Tredo, J Finer and M Hinchee (1993) Stable transformation via particle bombardment in two different soybean regeneration systems Plant Cell Rep 12:pp 408 - 413 71 Seo P.J., Xiang F., Qiao M., Park J.Y., Lee Y.N., Kim S.G., Lee Y H., Park W.J., Park C.M (2009), The MYB96 transcription factor mediates abscisic acid signaling during droughr stress respone in Arabidopsis", Plant Physiol, 151, 275 - 289 72 Swathi A.T., Jami S.K., Datla R.S (2006), Genetic transformation of peanut (Arachis hypogaea L.) using cotyledonary node as explant and a promoterless gus: npt I fusion gene based vector , J.Biosci., 31, pp.235246 73 Tran L.S.P., Nakashima K., Sakuma Y., Simpson S D., Fujita Y., Maruyama K., Fujita M., Seki M., Shinozaki (2004), "Iso lation and functional analysis of Arabidopsis stress-inducible NAC transcription factors that bind to a droughtresponsive cis-element in the early responsive to dehydration stress promoter", The Plant Cell, 16, pp 2481-2498 74 Topping JF (1998), Tobacco transformation Methods of Molecuar Biology, 81: 36 75 Wang X (2005) , Regulatory functions of phospholipase D and phosphatidic acid in plant growth, development, and stress responses, Plant Physiol 139(2): 566- 573 76 Wang,N., Liu,M., Cheng,X and Ma,Y (2005), Institute of Agricultural Resources and Regional Planning, China Academy of Agricultural Science, 12 Zhongguancun South Street, Haidian, Beijing 100081, China Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ51HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn 77 Wang P.R., Deng X.J., Gao X.L., Chen J., Wan J., Jiang H., Xu Z.J., (2006), Progress in the study on DREB transcription factor, Yi Chuan, 28(3): 369-740 Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ52HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn 78 Xiaoshuang Li, Daoyuan Zhang, Haiyan Li, Yucheng Wang, Yuanming Zhang and Andrew J Wood (2014), EsDREB2B a novel truncated DREB2-type transcription factor in the desert legume Eremosparton songoricum, enhances tolerance to multiple abiotic stress in yeast and transgenic tobaco, BMC Plant Bilogy, 1471-2229 79 Zyprian E and Kudo C.I (1990), Agobacterium - mediated plant transformation by novel mini - T- vectors in conjunction with a highcopy vir region helper plasmid Plant Mol Biol, 15, pp:245-256 Số hóa Trung tâm Học liệu – Đ53HTN http://www.lrc.tnu.edu.vn PHỤLỤC Các môi trường MS ( Murashige Skoog, 1962) MS1 (1000ml) -> 20ml/l CaCl2.2H2O 440 Pha stock cho 50 lít mơi trường ( 440 x 50 =22000mg) => 22g: pha 1000ml stock Sử dụng lấy 20ml stock cho lít mơi trường MS2 (1000ml) -> 20ml/l KH2PO4 170 Pha stock cho 50 lít mơi trường -> 8500mg => 8,5g: pha 1000ml Sử dụng lấy 20ml stock cho lít mơi trường KNO3 1900 Pha stock cho 50 lít mơi trường -> 95000mg => 95g: pha 1000ml Sử dụng lấy 20ml stock cho lít mơi trường MgSO4.7H2O 370 Pha stock cho 50 lít mơi trường -> 18500mg => 18,5g: pha 1000ml Sử dụng lấy 20ml stock cho lít mơi trường NH4NO3 1650 Pha stock cho 50 lít mơi trường -> 82500mg => 82,5g: pha 1000ml Sử dụng lấy 20ml stock cho lít mơi trường MS3 (250ml) -> 5ml H3BO3 6,2 KI 0,83 MnSO4.4H2O 22,3 ZnSO4.7H2O 8,6 10 CoCl2.6H2O 0,025 11 CuSO4.5H2O 0,025 12 NaMoO4.2H2O 0,25 MS4 (250ml) -> 5ml/l 13 FeSO4.7H2O 27,8 14 37,3 Na2EDTA MS5 (250ml) -> 5ml/l 15 Glycine 16 Thiamin HCl 0,1 17 0,5 18 Pyridoxin HCl (vitamin B6) Nicotimic acid 19 Myo inositol 100 0,5 Pha 50 lít mơi trường -> 310 mg => 0,31g: pha 250ml stock Sử dụng lấy 5ml /l môi trường Pha 50 lít mơi trường -> 41,5 mg => 0,0415g: pha 250ml stock Sử dụng lấy 5ml /l môi trường Pha 50 lít mơi trường -> 1115 mg => 1,115g: pha 250ml stock Sử dụng lấy 5ml /l môi trường Pha 50 lít mơi trường -> 430 mg => 0,43g: pha 250ml stock Sử dụng lấy 5ml /l môi trường Pha 50 lít mơi trường -> 1,25 mg => 0,00125g: pha 250ml stock Pha 50 lít mơi trường -> 1,25 mg => 0,00125g: pha 250ml stock Pha 50 lít môi trường -> 12,5 mg => 0,0125g: pha 250ml stock Pha 50 lít mơi trường -> 1390 mg => 1,39g / 250ml stock Pha 50 lít mơi trường -> 1865 mg => 1,865g / 250ml stock Note: pha nước nóng tan hết cho FeSO4 vào đun cách thủy Pha 50 lít mơi trường -> 100 mg => 0,1g / 250ml stock Pha 50 lít môi trường -> mg => 0,005g / 250ml stock Pha 50 lít mơi trường -> 25 mg => 0,025g / 250ml stock Pha 50 lít mơi trường -> 25 mg => 0,025g / 250ml stock Pha 50 lít mơi trường -> 5000 mg => 5g / 250ml stock ... Nghiên cứu tạo dòng thuốc (Nicotiana tabacum L. ) mang gen GmDREB2 phận l p từ đậu tương Mục tiêu nghiên cứu Tạo dòng thuốc chuyển gen mang gen GmDREB2 phân l p từ đậu tương Nội dung nghiên cứu. .. cứu ( 1) Nghiên cứu tạo nguyên liệu biến nạp từ thuốc giống K326 ( 2) Nghiên cứu l y nhiễm A tumefaciens mang vector chuyển gen vào mảnh thuốc Tái sinh in vitro, chọn l c tạo dòng thuốc chuyển gen. .. thẩm thấu (iii) Các gen liên quan đến phát triển rễ Một số gen nghiên cứu nhiều năm gần l : LEA, P5CS, NCED, PLD [32], [40],[46] Gen LEA (Late Embryogenesis Abundant) nhóm gen liên quan tới nước