Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)

84 204 0
Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

Thông tin tài liệu

Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố kỹ thuật sử dụng tinh trùng đã xác định tính biệt cái đến khả năng sản xuất phôi in vitro và in vivo trên bò Holstein Friesian (Luận văn thạc sĩ)

IH IH NGUY N TH TUY T NHUNG U Y U T K THU T S D N KH NG C A M T S NH N XU HOLSTEIN FRIESIAN LU KHOA H P - 2015 IH IH NGUY N TH TUY T NHUNG U Y U T K THU T S D N KH NG C A M T S NH N XU : 60.62.01.05 LU C P ng d n khoa h c: m TS - 2015 i ii Sinh iii i ii iii vi vii viii 1.1 B 1.1.1 1.1.3 1.2.1 .7 1.3.1 , .10 12 12 13 1.4.3 16 17 18 iv .20 .21 22 24 25 27 27 27 .27 27 itro .27 28 28 28 29 29 32 .34 35 35 3.1.1 3.1.2 Ch 35 37 v 39 .41 45 .45 47 48 50 .51 3.3.2 53 53 55 56 57 3.4.3 58 61 62 68 vi BSA : Bovine Serum Albumin FCS : Foetal Calf serum FSH : Follicle Stimulating Hormone GnRH : Gonadotropin Releasing Hormone HEPES : N-(2 Hydroxyethyl) piperazine- HF : Holstein Friesian LH : Luteinizing Hormone LTH : Luteo Tropic Hormone PRH : Prolactin Releasing Hormone MEM : Minimum Essential Medium PGF : Prostaglandin F SOF : Synthetic oviduct fluid TCM-199 : Tisue culture medium 199 PCR : Polymerase chain reaction NST : -(2-ethanesulforic acid) vii 3.1: c 35 37 39 42 45 47 c 49 51 53 54 p 56 57 59 viii h 1.1: 11 17 23 33 36 38 39 40 42 : .43 7: 44 50 : 52 3.10: 55 57 60 60 nang 2 61 in vitro (P < 0,05) (P < 0,05) tinh (P < 0,05) in vitro -T - /ml in vivo 62 , , , in vitro Lan (2010), , (4), tr 36 39 -702 , , tr 140-143 , , tr 117-118 in vitro , , 75 82 Adams G P., Matteri R, L,, Ginther O J (1992), Effect of progesterone on ovarian follicles, emergence of follicular waves and circulating follicle-stimulating hormone in heifers , Journal of Reproduction and Fertility, 95, pp 627-640 Ahmad N., Townsend E C., Dailey R A., Inskeep E.K (1997), Relationship of hormonal patterns and fertility to occurrence of two or three waves of ovarian follicles, before and after breeding, in beef cows and heifers , Animal Reproduction Science, 49, pp 13-28 Bavister B D (1996), Culture of preimplantation embryos: facts and artifacts , Hum Reprod Update, 1, pp 91-148 Bearden H J., Fuquay J W (2000), The female reproduction system , Applied Animal reproduction, Prentice Hall, InC, pp 7-20 63 10 Blondin P., Beaulieu M., Fournier V., Morin N., Crawford L., Madan P., King W A (2009) Analysis of bovine sexed for IVF from sorting to the embryo , Theriogenology, 71, pp.30-38 11 Brackett B G., Oliphan G (1975), Capacitation of rabbit spermatozoa in vitro , Biology of Reproduction, 12, pp 260-274 12 Campbell B K., Scaramuzzi R J., Webb R (1995), Control of antral follicle development and selection in sheep and cattle , Journal of Reproduction and fertility, 49, pp 335-350 13 Carvalho J O., Satori R., Machado G M., Mourao G B., Dode M A N (2010), Quality assessement of bovine cryopreserved sperm after sexing by flow cytometry and their use in vitro embryo production , Theriogenology, 74, pp.1521-1530 14 De Loos F., Kastrop P., Vanmaurik P., Vanbeneden T H., Kruip T A M (1991), Heterologous cell contacts and metabolic coupling in bovine cumulus oocyte complexes , Molecular Reproduction and Development, 28, pp 255-259 15 Erickson B H (1965), Symposium on atomic energy in animal science: Radiation effects on gonadal development in farm animals , Journal of Animal Science, 24, pp 568-583 16 Fry R C., Naill E M., Sympson T J., Squires T J., Raynold J (1997), The collection oocytes from bovine ovaries , Theriogenology, 47, pp 977-987 17 Ganner D L (2006), Flow cytometric sexing of mammalian sperm , Theriogenology, 65, pp 943-957 18 Ginther O J., Knopf L., Kastelic J P (1989), Temposal associations among ovarian events in cattle during estrus cycles with two or three follicular waves , Journal of Reproduction and Fertility, 108, pp 271-279 19 Golberg E H., Boyse E A., Bennett D., Scheid M., Carswell E A (1971) Serologycal demonstration of H-Y (male) antigen on mouse sperm , Mature 232, pp 43 20 Goodhand K L., Staines M E., Hutchinson J S M., Broadbent P J (2000), In vivo oocyte recovery and in vitro embryo production from bovine oocyte doner treated with progestagen, oestradiol , Animal reproduction, 63, pp 145-185 64 21 Hayakawa H., Hirai T., Takimoto A., Ideta A., Aoyagi Y (2009), Superrovulation and embryo transfer in Holstein cattle using sexed sperm , Theriogenology, 71, pp 68-73 22 Heres A A., Merton J S., Haseleger W., Van A M., Wagertendenkedelecuw and Kemp B (1996), Optimization of sperm oocyte ration during IVF of bovine cumulus oocyte complexes , Theriogenology, 45, pp 226 23 Ijaz A., Lambert R D., Sirard M A (1994), in vitro cultured bovine granulose and oviductal cells secrete sperm motility-maintaining factor(s) , Molecular Reproduction and Development, 37, pp 54-60 24 Imai K., Tagawa M., Yoshioka H., Matoba S., Narita M., Inaba Y., Aikawa Y., Ohtake M., Kobayashi S (2006), The effiency of embryo production by ovum pick-up and in vitro fertilization in cattle , Journal of Reproduction and Development, 52, pp 19-29 25 Iwasaki, S., Kono, T., Nakahara, T., Shioya, Y., Fukushima, M., and New methods for the recovery of oocytes from Japanese jounal of Animal Reproduction (33), 188-192 26 Johnson L A, Welch G R (1999) Sex preselection: high-speed flow cytometric sorting of X- and Y-sperm for maximum efficiency Theriogenology, 52:1323 413 27 Kaimio I., Mikkola M., Lindeberg H., Heikkinen J., Hasler JF., Taponen J (2913), Embryo production with sex-sorted semen in superovulated dairy heifers and cows , Theriogenology, 80, pp 950-954 28 Kaska L., Smorag Z (1984), Number and quality of oocytes in relation to age of cattle , Animal Reproduction Science, 7, pp 451-460 29 Larson J E., Lamb G C., Funelll B J., Bird S., Martins A., Rodgers J C (2010), Embryo prodution in superovulted Angus cows insemination four times with sex-sorted or conventional, frozen-thawed semen , Theriogenology, 73, pp 698-307 30 Li C., Zhu., Xue S L., Zhang S L., Ma Z., Shi Z D (2009), Immunization against inhibin enchages both embryo quantity and quality in Holstein heifers after superovulation and insemination with sex-sorted semen , Theriogenology, 71, pp.1011-1017 65 31 Ling Z J., Lu K H (1990), Frequency of cleavage and development of in vitro bovine oocytes fertilized in different numbers in drops with different sperm concentrations , Theriogenology, 33, p 275 32 -Gatius F (2013), Approaches to increase reproductive efficiency in artificially inseminated dairy cows , Anim Reprod, v.10, n.3, p.143147 33 Factors of a noninfectious nature affecting fertility after artificial insemination in lactating da Theriogenology, 77, pp 1029-1041 34 Lu H H., Seidel G E., Chen M (2004), Effects of heparin and sperm concentration on cleavage and blastocyst development rates of bovine oocytes inseminated with flow cytometrically-sorted sperm , Theriogenology, 5, pp 819-830 35 Lu K H., Cran D G., Seidel Jr G E (1999), In vitro fertilization with flowcytometrically sorted bovine Theriogenology, 52, pp: 1393 405 36 Matthew B., Wheeler., Jack J., Rutledge., Fisher-Brown A., VanEtten T., Malusky S., Beebe D J (2006), Application of sexed semen technology to in vitro embryo production in cattle , Theriogenology, 65, pp 219227 37 Monk M., Handiside A H (1988), Sexing of preimplantation mouse embryo by measurerement of X linked gen dosage in a single blastomere , Jornal of reproduction fertilization, 82, pp 365-368 38 Monson R L., Fischer-Brown A (2005), Personal communication production of Holstein embryos using sex-sorted sperm and oocytes Journal of Dairy Science, 88, pp:776 82 39 Picard L., King W A., Betteridge K J (1985), Production of sexed calves from frozen-thawed embryos , Veterinary Record, 117, pp 603608 40 Reuben J M., Kristina B S., Gregg P A (2002), Regent advances in the superovulation in cattle , Reprod Nutri Dev, 42, pp 601-611 41 Saeki K., Nagao Y., Hoshil M., Nagai M (1995), Effects of heparin, sperm concentration and bull variation on in vitro fertilization of bovine oocytes in a protein-free media , Theriogenology, 43, pp 751-759 66 42 Sales J N S., Neves K A L., Souza A H., Crepaldi G A., Sala R V., Fosado M., Campos E P., Faria M (2011), Timming insemination using sex-sorted sperm , Theriogenology, 76, pp 427-435 43 Schenk J L., Suh T K., Cran D G., Seidel Jr G E (1999) Cryopreservation of flow52, pp:1375 91 Theriogenology, 44 Schenk J L., Suh T K., Seidel G E (2006), Embryo production from superovulated cattle following insemination of sexed sperm Theriogenology, 65, pp 299-307 45 Schroder A., Miller J R., Thomsen P D., Roschlau K., Avery B., Poulsen P., Schmidt M., Schwerin M (1990), Sex determination of bovine embryos using the polymerase chain reaction Animal Biotechnology 1, pp 121-133 46 Seidel G E (2003), Economics of selecting for sex: the most important genetic trait , Theriogenology, 59, pp.585-598 47 Seidel Jr G E., Schenk J L., Herickhoff L A., Doyle SP., Brink Z (1999), Inseminat Theriogenology, 52, pp:1407 20 48 Senger PL, Becker WC, Davidge ST, Hillers JK, Reeves JJ (1988), Influence of cornual insemination on conception in dairy cattle J Anim Sci, 66:3010-3016 49 Sirard M A., Leibfried-Rutledge M L., Parrish J J., Ware C., First N L (1988), The culture of bovine oocytes to obtain developmentally competent embryos , Biological Reproduction, 39, pp 546-552 50 Sirois J., Fortune J E (1990), Lengthening the bovine estrus cycle with low levels of exogenous progesterone: A model for studying ovarian follicular dominance , Endocrinology, 127, pp 916-925 51 Townson D H., Tsang P C W., Butler W R., Frajblat M., Griel Jr L C., Johnson C J., Milvae R A., Niksis G M., Pate J L (2002), Relationship of fertility to ovarian follicular waves before breeding in dairy cows , Journal of Animal Science, 80, pp 1053-1058 67 52 Tubman L M., Brink Z., Suh T K., Seidel Jr G E (2004), Characteristics of calves produced with sperm sexed by flow cytometry/cell so J Anim Sci, 82, pp:1029 36 53 Underwood S L., Bathgate R., Pereira D C., Castro A., Thomson P C., Maxwell W M C., Evans G (2010), Embryo production after in viro fertilization with frozen-thawed, sex-sorted, re-frozen-thawed bull sperm , Theriogenology, 73, pp 97-102 54 Williams T J (1986), A technique for sexing mouse embryos by a visual colorimetric assay of the X lingked enzyme, glucose-6-phosphat dehydrogenase , Theriogenology, 25, pp 733 55 Wilson R D., Fricke P M., Leibfried-Rutledge M L., Rutledge J J., Syverson C M., Wwigel K A (2006), In vitro production of bovine embryo using sex-sorted sperm Theriogenology, 65, pp 1007-1015 56 Zhang M., Lu K H., Seidel G E (2003), Development of bovine embryos after in vitro fertilization of oocytes with flow cytometrically sorted, stained and unsorted sperm , Theriogenology, 60, pp:1657 1663 57 Ziebe S., Petersen K., Lindenberg S., Anderson A G., Gabrielsen A., Andersen A N (1997), Embryo morphology or cleavage stage: How to select the best embryo for transfer after in vitro fertilization , Human Reproduction, 12, pp 1545-1549 68 - - - - Sanyo CO2 Incubator - -325 2000 - Pippete pasteur ainer disk, Nunc disk 69 - - Sucrose C12H22O11 196-00015 Wako Japan Disodium Hydrogenphosphate Na2HPO4 197-02865 Wako Japan D(+) Glucose C6H12O6 041-00595 Wako Japan Potassium Dihydrogenphosphate KH2PO4 165-04242 Wako Japan Potassium Chloride KCl 163-03545 Wako Japan Sodium Hydrogen Carbonate NaHCO3 191-01305 Wako Japan Sodium Chloride NaCl 191-01665 Wako Japan Sodium Dihydrogen Phosphate Dihydrate NaH2CO3.2H2O 192-02815 Wako Japan Calcium Chloride Dihydrate CaCl2.2H2O 031-00435 Wako Japan Phenol Red Solution 0,5% P0290 Sigma Magnesium Chloride Hexahydrate MgCl2.6H2O 131-00162 Wako Japan Ethylene Glycol C2H6O2 Prolabo Germany 70 Glycerol Prolabo Germany Medium 199 3769 GIBCO BME Amino Acide Solution 50x B-6766 Sigma MEM Non-Essential Amino Acide Solution 100x 02380 GIBCO Penicilin G Potassium 200.000 Meiji Seika Kaisha LTD Tokyo Japan Novo-Heparin Pharmaceutical Products LTD V ventis Japan Streptomycin Sulphate 1g Meiji Kaisna LTD Tokyo Japan L-Glutamic Acid G-4815 Sigma Albumin, Bovine A-4378 Sigma Caffein Sodium Benzoate C-4144 Sigma L(+)-Lactic Acid L-4388 Sigma Albumin, Bovine A-7030 Sigma Sodium Pyruvate 199-03062 Wako Japan - PGF2 - Estradiol -) NaCl 8,0g 71 KCl 0,2g Na2HPO4 1,15g KH2PO4 0,2g 700ml CaCl2 0,1g MgCl2.6H2O 0,1g 200ml - penicilin/ml + 100 l streptomycin/ml 100.000iu penicilin/ml + 100 l streptomycin/ml TCM 199 47,5 ml CS 2,5 ml Penicilin-G 10.000IU (100IU/ml) Streptomycin Sulfate 72 NaCl 4,3092g KCl 0,1974g CaCl2.2H2O 0,2171g NaH2PO4.2H2O 0,0840g MgCl2.6H2O 0,0697g 0,1ml NaHCO3 2,5873g Phenol Red 0,5% 0,04ml 76ml Na pyruvate 0,01375g Penicilin 10.000IU Streptomycin 10mg 24ml 50ml Na Caffein benzoate 0,1942g 73 Heparin (Novo-heparin: 5000IU/ml) 40ml BSA 400mg 10ml BSA 200mg NaCl 6,7031g KCl 0,2311g Na Pyruvate 0,0440g NaHCO3 2,2011g Phenol Red 5% 2ml Hemicalcium lactate 0,5996g 76ml B 20ml BME Essential Amino Acids 2ml MEM Non Essential Amino Acids 1ml 74 L-Glutamic Acid (2mg/ml) 1ml BSA 3mg/ml Penicilin-G 10.000IU (100IU/ml) Streptomycin Sulfate - VIGRO Freeze medium ... 3.10: 55 57 60 1 , nhu C in , vivo, in vitro c Song, sinh , h , in vivo in vitro in vitro in vivo in vitro vivo - in 1.1 B 1.1.1 sinh, ( ( ) ) , 0,3g, 10 - 20g , , , 15 mm... vitro in vitro, in vitro in vitro in vitro ( 1988) [49] , , in vitro in vivo 18 , in vitro in vitro (Bavister, 1996) [8] Tuy , Defined Medium ( 1975) [11] in vitro , 20 in vitro , 1.5 C, CO2 19 ,... in vitro (Sales v , 2009) [10] , 2011) [42] 1.4 DNA DNA DNA, DNA DNA DNA (Ganner , 2006) [17], s , 17 g Theo (Johnson and Welch 1999) [26] 1.5 in vitro in vitro in vitro in vitro, in vitro in

Ngày đăng: 20/02/2018, 20:19

Từ khóa liên quan

Tài liệu cùng người dùng

  • Đang cập nhật ...

Tài liệu liên quan